Определение гидроксикоричных кислот в растительном сырье спектрофотометрическим методом. Часть 1. Прямая спектрофотометрия (обзор)

Е. В. Компанцева; А. Ю. Айрапетова; А. С. Саушкина

doi:10.30895/1991-2919-2024-14-2-181-195

Определение гидроксикоричных кислот в растительном сырье спектрофотометрическим методом. Часть 1. Прямая спектрофотометрия (обзор)

Е. В. Компанцева, А. Ю. Айрапетова, А. С. Саушкина

https://doi.org/10.30895/1991-2919-2024-14-2-181-195

Полный текст:

PDF (Rus) | HTML | XML |

сгенерировать QR код

Содержание

Перейти к:

Резюме

ВВЕДЕНИЕ. Поиск новых источников растительного сырья, содержащего гидроксикоричные кислоты, с целью создания на их основе современных лекарственных препаратов является актуальным направлением научных исследований. Для оценки содержания гидроксикоричных кислот в растительном сырье наиболее часто используются методики, в основе которых лежит спектрофотометрический метод и его модификации.

ЦЕЛЬ. Оценка возможности определения количественного содержания гидроксикоричных кислот в растительном сырье методом прямой спектрофотометрии.

ОБСУЖДЕНИЕ. В обзоре систематизирована информация об использовании метода прямой спектрофотометрии для количественного определения гидроксикоричных кислот в растительном лекарственном сырье в 70 видах растений, произрастающих или культивируемых на территории Российской Федерации. Материалом исследования служили источники отечественной литературы за период 2007–2023 гг. Показано, что метод прямой спектрофотометрии достаточно прост в исполнении, характеризуется высокой воспроизводимостью, не требует использования дополнительных реактивов и проведения трудоемких операций. Отмечено, что при определении гидроксикоричных кислот методом прямой спектрофотометрии могут быть получены завышенные результаты из-за наложения полос поглощения полифенольных соединений разной структуры.

ВЫВОДЫ. Метод прямой спектрофотометрии можно рассматривать как метод количественного определения суммы фенольных соединений (в том числе и суммы гидроксикоричных кислот) в растительном сырье. Различные подходы к количественному определению гидроксикоричных кислот методом прямой спектрофотометрии в лекарственном растительном сырье могут являться методологической основой для разработки методик анализа в зависимости от химического состава биологически активных соединений, содержащихся в растительном сырье и извлечениях из них.

Ключевые слова

лекарственное растительное сырье, лекарственные растения, гидроксикоричные кислоты, коричная кислота, кофейная кислота, розмариновая кислота, феруловая кислота, хлорогеновая кислота, цикориевая кислота, методики определения, условия извлечения, количественное определение, прямая спектрофотометрия

Для цитирования:

Компанцева Е.В., Айрапетова А.Ю., Саушкина А.С. Определение гидроксикоричных кислот в растительном сырье спектрофотометрическим методом. Часть 1. Прямая спектрофотометрия (обзор). Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств. 2024;14(2):181-195. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2024-14-2-181-195

For citation:

Kompantseva E.V., Ayrapetova A.Yu., Saushkina A.S. Spectrophotometric Determination of Hydroxycinnamic Acids in Herbal Drugs. Part 1. Direct Spectrophotometry (Review). Bulletin of the Scientific Centre for Expert Evaluation of Medicinal Products. Regulatory Research and Medicine Evaluation. 2024;14(2):181-195. (In Russ.) https://doi.org/10.30895/1991-2919-2024-14-2-181-195

ВВЕДЕНИЕ

Гидроксикоричные кислоты (ГКК) — один из видов синтезируемых растениями биологически активных соединений (БАС). По химическому строению они относятся к фенолам и являются представителями обширного класса фенилпропаноидов [1]. Спектр фармакологической активности большинства ГКК достаточно широк. Они проявляют антиоксидантное, антигипоксическое, противовоспалительное, антиаритмическое, противогрибковое, антимикробное, желчегонное, гепатопротекторное, антиаллергическое виды действия [1][2]. ГКК эффективно нейтрализуют свободные радикалы в организме и связывают ионы тяжелых металлов. Комбинация различных ГКК в лекарственных растениях обусловливает суммарный фармакологический эффект препаратов на их основе. Поиск новых источников лекарственного растительного сырья с высоким содержанием ГКК является на сегодняшний день актуальной задачей для медицины и фармации, что требует применения объективных и доступных методов качественного и количественного анализа этой группы соединений.

Для изучения ГКК в растительном сырье используют различные способы их извлечения и методики анализа [3]. Согласно требованиям Государственной фармакопеи Российской Федерации XIV изд. для идентификации ГКК используются методы бумажной или тонкослойной хроматографии, а для количественного анализа — спектрофотометрический метод.

Цель работы — оценка возможности определения количественного содержания гидроксикоричных кислот в растительном сырье методом прямой спектрофотометрии.

Материалом для исследования являлись источники отечественной научной литературы (научные журналы и публикации научных конференций) информационно-поисковых (PubMed, Google Scholar) и библиотечных баз данных (eLIBRARY.RU, КиберЛенинка), а также приложения ResearchGate для семантического поиска за период 2007–2023 гг.

ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ

Количественный анализ ГКК методом спектрофотометрии с УФ-детектированием основан на их способности поглощать электромагнитное изучение в области 220–330 нм. Характеристики УФ-спектров ГКК в различных растворителях приведены в таблице 1. Анализ данных литературы за последние 15 лет показал, что большинство российских авторов применяют метод прямой спектрофотометрии для количественного определения суммы ГКК, используя как различные способы извлечений из растительного сырья, так и различные расчеты содержания ГКК в них.

Таблица 1. Спектрофотометрические характеристики гидроксикоричных кислот

Table 1. Spectrophotometric characteristics of hydroxycinnamic acids

Гидроксикоричная кислота *Hydroxycinnamic acid*	Растворитель *Solvent*	Максимумы поглощения, нм *Absorption maxima, nm*			А^1%_1см А^1%_1сm	Источник литературы *Reference*
Гидроксикоричная кислота *Hydroxycinnamic acid*	Растворитель *Solvent*	1	2	3	А^1%_1см А^1%_1сm	Источник литературы *Reference*
Коричная Cinnamic acid	Этанол 70% Ethanol 70%	216	270	–	–	[4]
Коричная Cinnamic acid	Этанол 96% Ethanol 96%	223	278		–	[5]
Кофейная Caffeic acid	Этанол 20% Ethanol 20%	–	–	325	–	[6]
Кофейная Caffeic acid	Этанол 95% Ethanol 95%	217	298 пл. (sh.)	328	782	[7]
Кафтаровая Caftaric acid	Этанол 95% Ethanol 95%	217	299 пл. (sh.)	330	–	[7]
Кумаровая Coumaric acid	Этанол 96% Ethanol 96%	228	293 пл. (sh.)	310	–	[5]
Розмариновая Rosemarinic acid	Этанол 95% Ethanol 95%	217	292	328	500	[8][9]
Синаповая Sinapic acid	Метанол 70% Methanol 70%	235	–	320	–	[10]
Феруловая Ferulic acid	Этанол 70% Ethanol 70%	215	292 пл. (sh.)	318	910	[4]
Хлорогеновая Chlorogenic acid	Этанол 30% Ethanol 30%	–	–	330	507	[11]
Цикориевая Chicoric acid	0,1М HCl 0.1M HCl	215	290 пл. (sh.)	328	782	ФС.2.5.0055.15*

Таблица составлена авторами по данным источников литературы /
The table is prepared by the authors using data from the referenced sources

Примечание. «–» — данные отсутствуют;
А^1%_1см — удельный показатель поглощения в 3-м максимуме поглощения; пл. — плечо;
* ФС.2.5.0055.15 Эхинацеи пурпурной трава Echinaceae purpureae herba.
Государственная фармакопея Российской Федерации XIV изд.

Note. –, no data; А^1%_1сm, specific absorbance at absorption maximum 3; sh., shoulder peak.
* Monograph FS.2.5.0055.15 Purple coneflower herb (Echinaceae purpureae herba).
State Pharmacopoeia of the Russian Federation, ed. XIV.

Так, О.Л. Сайбель и соавт. с использованием метода прямой спектрофотометрии определили оптимальные сроки заготовки травы цикория обыкновенного (Cichorium intybus L.) [12]. Сумму фенольных соединений экстрагировали на кипящей водяной бане спиртом этиловым 50% при соотношении «сырье (г) : экстрагент (мл)» 1:100 в течение 60 мин с момента закипания растворителя. Содержание суммы фенольных соединений (4,3%) в пересчете на цикориевую кислоту вычисляли по величине оптической плотности раствора стандартного образца цикориевой кислоты.

А.В. Азнагуловой и В.А. Куркиным описана методика определения суммы полифенольных соединений в траве одуванчика лекарственного (Taraxacum officinale Wigg.) с экстракцией спиртом этиловым 50% при нагревании на кипящей водяной бане в течение 2 ч. Согласно этой методике измеряют оптическую плотность извлечения при длине волны 330 нм и рассчитывают количественное содержание суммы полифенольных соединений в пересчете на хлорогеновую кислоту (7,0%) по величине удельного показателя поглощения А^1%_1см [13].

В работе Н.Ф. Гончарова [14] определена сумма ГКК в нефармакопейных видах рода боярышник (Crataegus) методом прямой спектрофотометрии после однократной экстракции на кипящей водяной бане спиртом этиловым 70% при соотношении «сырье (г) : экстрагент (мл)» 1:10. Содержание суммы ГКК в плодах в пересчете на хлорогеновую кислоту составило 0,17% для боярышника страшного (Crataegus horrida Medik), 0,18% для боярышника густоцветкового (C. densiflora Sarg), 0,20% для боярышника сочного (С. succulenta Schrad. ex Link), 0,15% для боярышника однопестичного (C. monogyna Jacq.) и 0,18% для боярышника волжского (С. volgensis Pojark.).

Приведенные примеры свидетельствуют о разных условиях извлечения (экстрагент, соотношение «сырье : экстрагент», кратность и время экстракции, температура) и выборе преобладающего соединения при расчете содержания суммы ГКК. В таблице 2 приведены данные литературы по количественному определению суммы ГКК (или суммы фенольных соединений) в анализируемом растительном сырье методом прямой спектрофотометрии, условия их экстракции и содержание в пересчете на преобладающую ГКК.

Таблица 2. Определение суммы гидроксикоричных кислот
(или суммы фенольных соединений) методом прямой спектрофотометрии

Table 2. Determination of total hydroxycinnamic acids
(or total phenolic compounds) by direct spectrophotometry

Название растения *Plant name*	Сырье *Herbal drug*	Соотношение сырье (г) : экстрагент (мл) *Herbal drug (g) : extraction solvent (mL)*	Кратность *Number of extractions*	Температура проведения экстракции, ˚С *Extraction temperature, ˚ С*	Время, мин *Time, min*	Найдено, % * Calculated value, % *	Источник литературы *Reference*
Экстрагент — спирт этиловый 30% *Extraction solvent: ethanol 30%*
Inula salicina L.	Трава Herb	1:100	1	100	45	7,3 хлрг. (chl.)	[15]
Melampyrum argyrocomum (Fisch. ex Ledeb.) Koso-Pol.	Трава Herb	–	–	100	–	0,48 хлрг. (chl.)	[16]
Picea abies (L.) H. Karst.	Корни Root	1:30	3	100	30	8,26 хлрг. (chl.)	[11]
Экстрагент — спирт этиловый 40% Extraction solvent: ethanol 40%
Acroptilon repens L.	Трава Herb	1:100	1	100	30	1,9 хлрг. (chl.)	[17]
Bupleurum scorzoneri Willd.	Трава Herb	1:100	1	100	60	4,9 хлрг. (chl.)	[18]
Echinacea purpurea (L.) Moench.	Корни Root	–	–	100	60	2,9 цик. (chic.)	¹
Helianthus annuus L.	Листья Leaf	1:50	1	60	60	0,8 фер. (fer.)	[19]
Lycopus europaeus L.	Трава Herb	1:100	1	60	60	8,0 розм. (ros.)	[20]
Scabiosa succisa L.	Трава Herb	1:100	1	100	30	4,5 хлрг. (chl.)	[21]
Solidago canadensis L.	Листья Leaf	–	–	–	–	0,73 цик. (chic.)	[22]
Solidago canadensis L.	Цветки Flower	–	–	–	–	0,76 цик. (chic.)	[22]
Taraxacum officinale Wigg.	Корни Root	1:100	1	100	120	2,8 хлрг. (chl.)	[7]
Vaccinium uliginosum L.	Листья Leaf	1:40 1:40 1:20	3	100	15	2,0 хлрг. (chl.)	[23]
Vaccinium uliginosum L.	Плоды Fruit	1:40 1:40 1:20	3	100	15	7,4 хлрг. (chl.)	[23]
Экстрагент — спирт этиловый 50% Extraction solvent: ethanol 50%
Chondrilla juncea L.	Трава Herb	1:100	1	100	45	3,8 хлрг. (chl.)	[24]
Dracocephalum moldavica L.	Трава Herb	1:100	1	100	60	11,0 розм. (ros.)	[8]
Hypericum perforatum L.	Свежие листья Fresh leaf	–	2	20	1440	2,4 хлрг. (chl.) 1,7 коф. (caf.)	[25]
Ledum palustre L.	Листья Leaf Стебли Stem	1:100	1	100	30	3,8 хлрг. (chl.) 3,64хлрг. (chl.)	[26]
Melilotus albus Medik.	Трава Herb	1:100	1	100	45	5,2 хлрг. (chl.)	[27]
Picris hieracioides L.	Трава Herb	1:100	1	100	45	5,9 хлрг. (chl.)	[28]
Salvia verticillata L.	Трава Herb	1:50	2	100	30	4,6 хлрг. (chl.)	[29]
Thalictrum flavum L.	Трава Herb	1:100	1	100	30	3,0 хлрг. (chl.)	[30]
Tilia cordata Mill.	Кора Bark	5:50	2	100	60	2,0 хлрг. (chl.)	[31]
Urtica cannabina L.	Листья Leaf	–	–	–	–	0,8 хлрг. (chl.)	[32]
Urtica cannabina L.	Цветки Flower	–	–	–	–	0,8 хлрг. (chl.)	[32]
Экстрагент — спирт этиловый 70% Extraction solvent: ethanol 70%
Agastache rugosa (Fisch. & C.A. Mey.) Kuntze	Листья Leaf	1:30	1	80	60	1,7 розм. (ros.)	[33]
	Плоды Fruit	1:30	1	80	60	1,0 розм. (ros.)
	Трава Herb	1:30	1	80	60	0,5 розм. (ros.)
	Цветки Flower	1:30	1	80	60	2,5 розм. (ros.)
Agrimonia cupatoria Ldb.	Трава Herb	–	1	100	–	2,5 хлрг. (chl.)	[34]
Allium ursinum L.	Трава Herb	1:30	3	100	15	6,1 фер. (fer.)	[35]
Cacalia hastata L.	Листья Leaf	1:200	2	100	60	13,0 хлрг. (chl.)	[36]
Cichorium intybus L.	Трава Herb	1:100	1	100	60	2,9 цик. (chic.)	[12]
	Листья Leaf	1:100	1	100	60	6,7 цик. (chic.)
	Цветки Flower	1:100	1	100	60	4,9 цик. (chic.)
Comarum palustre L.	Корни Root	1:10	1	100	60	1,8 хлрг. (chl.)	[4]
Equisetum sylvaticum L.	Трава Herb	1:10	1	60	–	0,6**	[37]
Eryngium planum L.	Трава Herb Корни Root	–	–	–	–	1,69 розм. (ros.) 0,42 розм. (ros.)	[38]
Eryngium caucasicum Trautv.	Трава Herb Корни Root	–	–	–	–	1,72 розм. (ros.) 0,07 розм. (ros.)	[38]
Echinacea purpurea (L.) Moench	Трава Herb	–	–	100	60	4,5 цик. (chic.)	²
Galinsoga parviflora Cav.	Трава Herb	1:100	1	100	30	2,0–6,9 хлрг. (chl.)	[39]
Hamerion angustifolium (L.) Holub.	Трава Herb Листья Leaf	–	–	–	–	2,70 кор. (cin.) 1,59 кор. (cin.)	[40]
Knautia arvensis (L.) Coult.	Трава Herb	1:80	1	100	45	2,1 хлрг. (chl.)	[41]
Onopordum acanthium L.	Трава Herb	1:50	1	100	60	2,9 коф. (caf.)	[42]
Perilla frutescens (L.) Britton	Трава Herb	1:50	1	100	60	4,7 розм. (ros.)	[43]
Persicaria maculosa S.F. Gray	Трава Herb	1:100	2	100	30	1,9 хлрг. (chl.)	[44]
Phacelia tanacetifolia Benth.	Трава Herb	1:30	3	100	30	3,3 хлрг. (chl.)	[45]
Rosmarinus officinalis L.	Трава Herb Листья Leaf	1:40	1	100	30	5,9 розм. (ros.)	[46]
Rosmarinus officinalis L.	Трава Herb Листья Leaf	1:50	1	100	60	3,7 розм. (ros.)	[46]
Salvia splendens Sellow ex Nees.	Листья Leaf	–	–	–	–	1,23 хлрг. (chl.)	[47]
Solidago canadensis L.	Трава Herb	1:50 1:30 1:20	3	100	30	4,7 хлрг. (chl.)	[48]
Solidago canadensis L.	Стебли Stem	–	–	–	–	4,2 хлрг. (chl.)	[49]
Stevia rebaudiana Bertoni	Листья Leaf	1:100	1	100	45	10,5 хлрг. (chl.)	[50]
Urtica angustifolia Fisch. ex Hormen	Листья Leaf	–	–	–	–	1,2 коф. (caf.)	[51]
Urtica dioica L.	Листья Leaf	1:50	2	100	30	2,0 хлрг. (chl.)	[52]
Urtica dioica L.	Листья Leaf	–	–	–	–	1,5 хлрг. (chl.)	[32]
Urtica dioica L.	Цветки Flower	–	–	–	–	1,5 хлрг. (chl.)	[32]
Ziziphora clinopodioides Lam.	Трава Herb	1:100 1:70	2	100	20	4,9 хлрг. (chl.)	[53]
Vaccinium uliginosum L.	Листья Leaf	1:50	1	100	30	1 хлрг. (chl.)	[54]
Экстрагент — спирт этиловый 90% Extraction solvent: ethanol 90%
Arctosaphylos uva-ursi (L.) Spreng.	Листья Leaf	1:30	3	100	30	3,5 хлрг. (chl.)	[55]
Arctosaphylos uva-ursi (L.) Spreng.	Листья Leaf	1:30	3	100	30	2,7 хлрг. (chl.)	[56]
Calluna vulgaris (L.) Hull	Трава Herb	1:20	4	100	30	2,3–9,1 хлрг. (chl.)	[57]
Экстрагент — спирт этиловый 95% Extraction solvent: ethanol 95%
Sorbus aucuparia L.	Плоды Fruit	1:30	1	80	60	0,99 хлрг. (chl.)	[58]
Экстрагент — спирт этиловый 96; 80; 70% Extraction solvents: ethanol 96, 80, 70%
Filipendula ulmaria (L.) Maxim.	Трава Herb	–	3	100	–	7,3 кор. (cin.)	[59]
Экстрагент не указан *Extraction solvent: not specified*
Artemisia subviscosa Turcz. ex Besser	Трава Herb	–	–	100	–	4,15 хлрг. (chl.)	³
Artemisia santolinifolia Turcz. ex Besser	Трава Herb	–	–	100	–	4,22 хлрг. (chl.)	⁴
Cynara cardunculus L.	Листья Leaf	–	–	–	–	4,0 хлрг. (chl.)	[60]
Chimaphilla umbellata L.	Листья Leaf	–	–	–	–	2,85 хлрг. (chl.)	[56]
Lotus corniculatus L.	Трава Herb	–	–	–	–	0,14 коф. (caf.)	[61]
Malva sylvestris L.	Листья Leaf	–	–	–	–	2,84 хлрг. (chl.)	[62]
Pyrola rotundifolia L.	Листья Leaf	–	–	–	–	2,46 хлрг. (chl.)	[56]
Vaccinium arctostaphylos L.	Листья Leaf	–	–	–	–	11,2 хлрг. (chl.)	[63]
Vaccinium myrtillus L.	Листья Leaf	–	–	–	–	7,05 хлрг. (chl.)	[63]

Таблица составлена авторами по данным источников литературы /
The table is prepared by the authors using data from the referenced sources

Примечание. «–» — данные отсутствуют;
* — найдено в пересчете на: кор. — коричную кислоту, коф. — кофейную кислоту,
розм. — розмариновую кислоту, фер. — феруловую кислоту,
хлрг. — хлорогеновую кислоту, цик. — цикориевую кислоту;
** — нет данных, на какую кислоту ведется пересчет.

Note. –, no data;
* The calculated values are expressed as cinnamic acid (cin.),
caffeic acid (caf.), rosemarinic acid (ros.), ferulic acid (fer.),
chlorogenic acid (chl.), and chicoric acid (chic.).
** The acid for calculations is not specified.

В качестве растительного сырья наиболее часто используют траву (около 50%), значительно реже — листья (около 30%) (в случае Hypericum perforatum L. — свежие листья). Очень редко сырьем служат корни, кора, плоды, стебли (15%) (табл. 2). Сравнительный анализ количественного содержания ГКК надземных (трава) и подземных органов (корни) в одном растении проведен только для Eryngium planum L. (1,69 и 0,42% соответственно) и Eryngium caucasicum Trautv. (1,72 и 0,07% соответственно). Эти данные наглядно показывают, что в траве содержится значительно большее количество ГКК по сравнению с корнями, за исключением ели обыкновенной, в корнях которой регистрируется высокое содержание ГКК [11].

Для получения извлечений из исследуемого растительного сырья в качестве экстрагента используют спирт этиловый в концентрации 30–96%. Наиболее часто применяется спирт этиловый 70%, что обусловлено лучшей растворимостью в нем полифенольных соединений, в том числе ГКК. В основном соотношение «сырье (г) : экстрагент (мл)» составляет 1:100 (55%), достаточно часто — 1:50 (28%), реже — 1:10; 1:20; 1:30 и 1:40, очень редко — 1:200. Такой разброс в соотношении «сырье (г) : экстрагент (мл)» обусловлен различным содержанием ГКК в анализируемых образцах растительного сырья (табл. 2).

Как правило, проводится однократная экстракция при нагревании на кипящей водяной бане в течение фиксированного времени при определенной температуре. В редких случаях применяют многократную (2–4-кратную) экстракцию. Например, в случае Helianthus annuus L. (листья), Lycopus europaeus L. (трава), Equisetum sylvaticum L. (трава) экстракцию проводят при температуре 60 °С, а для Sorbus aucuparia L. (плоды) — при 80 °С. Наибольшая длительность экстракции описана в работе Ю.В. Загурской и соавт. [25] — при пробоподготовке образцов свежих листьев Hypericum perforatum L. экстракцию проводили при комнатной температуре в течение 24 ч (табл. 2).

Следует отметить разные способы уточнения объема полученного извлечения. Так, при однократной экстракции травы одуванчика лекарственного (Taraxacum officinale Wigg.) и сырья хондриллы ситниковидной (Chondrilla juncea L.) авторы восполняют потерю экстрагента в процессе извлечения, доводя массу экстрагентом до исходного значения, взвешивая колбу до и после экстракции [13][24]. Однако зачастую авторы предлагают доводить объем экстракта растворителем до метки после охлаждения полученного извлечения и фильтрования через бумажный фильтр в мерную колбу (см., например, [4][6][8][35]).

Количественное содержание суммы ГКК в анализируемом сырье рассчитывают в пересчете на преобладающую кислоту, которой наиболее часто является хлорогеновая кислота (около 44%) (табл. 2). Значительно реже в качестве маркера содержания суммы ГКК принимают розмариновую, феруловую, кофейную или цикориевую кислоты. При анализе травы и листьев Hamerion angustifolium (L.) Holub. сумму ГКК рассчитывали на транс-коричную кислоту. При использовании для анализа различных видов растительного сырья (листьев и травы; листьев и цветков; листьев и плодов; листьев и стеблей) содержание суммы ГКК в пересчете на преобладающую кислоту, как правило, было практически одинаковым [26][32]. Исключением являются трава и корни Eryngium planum L. и Erythronium caucasicum Trautv. — установлено, что сумма ГКК в траве была выше, чем в корнях, в 3 и 16 раз соответственно [38].

В качестве экстрагента ГКК, как правило, используется спирт этиловый, однако некоторые авторы показали возможность экстракции ГКК водой. Из листьев гинкго двулопастного (Ginkgo biloba L.) и яблони лесной (Malus sylvestris Mill.), травы астрагала вздутого (Astragalus physodes L.) и девясила британского (Inula britannica L.) ГКК двукратно экстрагировали водой при нагревании на кипящей водяной бане по 15 мин. Содержание суммы ГКК в сырье в пересчете на кофейную кислоту рассчитывали по величине А^1%_1см кофейной кислоты. Содержание ГКК составило в листьях Malus sylvestris Mill. 2,3% [64], листьях Ginkgo biloba L. — 0,29% [6], траве Inula britannica L. и Astragalus physodes L. — 5,16 и 0,57% соответственно [65][66]. Р.И. Лукашов установил, что экстракция из травы эхинацеи пурпурной (Echinacea purpurea (L.) Moench) 60% ацетоном увеличивает извлечение суммы ГКК в 2–3 раза по сравнению с экстракцией спиртом этиловым [67].

Резюмируя данные по использованию метода прямой спектрофотометрии для количественного определения ГКК в растительном сырье, следует отметить, что этот метод характеризуется высокой чувствительностью, но неселективен. Основным недостатком описанных спектрофотометрических методик является невозможность раздельно определять количественное содержание каждого из веществ или сумму группы веществ одного класса соединений, в том числе ГКК, кумаринов, флавоноидов и антрахинонов, при их совместном присутствии. Метод позволяет определять только общее содержание полифенольных соединений в пробе⁵.

В ряде работ авторы утверждают, что методом прямой спектрофотометрии можно определить не сумму ГКК, а сумму фенольных соединений в пересчете на конкретную ГКК (см., например, [18][20][25][29][38][54]). Согласно ФС.2.5.0084.18 Мелиссы лекарственной трава (Melissae officinalis herba) ГФ РФ XIV изд. методом прямой спектрофотометрии определяют сумму фенольных соединений в пересчете на розмариновую кислоту. В то же время другие авторы отмечают, что прямым спектрофотометрическим методом они находят сумму именно ГКК (см., например, [14][17][22][28][48][57][64][65]). Также, согласно требованиям ФС.2.5.0019.15 Крапивы двудомной листья (Urticae dioicaе folia) ГФ РФ XIV изд., методом прямой спектрофотометрии проводится определение суммы оксикоричных кислот. Можно согласиться с теми авторами, которые критично подходят к полученным результатам и отмечают, что метод дает завышенные результаты и может быть использован только для определения суммы фенольных соединений⁶.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Для количественного определения полифенольных соединений, в том числе и ГКК, в растениях, произрастающих или культивируемых на территории Российской Федерации, широко используется метод прямой спектрофотометрии. Объектами исследования в основном является надземная часть растений (трава, листья, цветки, побеги, плоды и т.д.), значительно реже — корни и корневища с корнями.

Выбор условий извлечения ГКК из РС (экстрагент, соотношение «сырье : экстрагент», кратность и длительность экстракции, температура), как правило, обусловлен составом биологически активных соединений. Установлено, что ГКК из растительного сырья извлекают в основном спиртом этиловым различной концентрации при одно-трехкратной экстракции путем настаивания растительного сырья с экстрагентом при комнатной температуре или на кипящей водяной бане. Количественное содержание суммы ГКК пересчитывают на преобладающую кислоту по градуировочному графику, оптической плотности стандартного образца, а также используя удельный показатель поглощения.

Использование метода прямой спектрофотометрии обусловлено его достаточной простотой, высокой воспроизводимостью, отсутствием трудоемких операций и необходимости использования дополнительных реактивов. Однако, если растительное сырье содержит другие фенольные соединения, которые могут поглощать в аналитической области спектра поглощения преобладающих ГКК и суммируются с поглощением ГКК, метод дает завышенные результаты, не соответствующие истинному содержанию ГКК.

Таким образом, метод прямой спектрофотометрии можно рассматривать только как метод количественного определения суммы фенольных соединений (в том числе и суммы ГКК) в растительном сырье.

Проведенный анализ публикаций российских авторов по использованию метода прямой спектрофотометрии для количественного определения ГКК в растениях, произрастающих и культивируемых на территории Российской Федерации, может служить методологической основой разработки методик анализа в зависимости от химического состава БАС, содержащихся в растительном сырье и извлечениях из них.

Вклад авторов. Все авторы подтверждают соответствие своего авторства критериям ICMJE. Наибольший вклад распределен следующим образом: Е.В. Компанцева — существенный вклад в концепцию статьи; сбор, анализ научных публикаций; А.Ю. Айрапетова — сбор, анализ научных публикаций, редактирование текста рукописи; А.С. Саушкина — написание текста рукописи и критический пересмотр его содержания.

Authors’ contributions. All authors confirm that their authorship meets the ICMJE criteria. The most significant contributions were as follows. Evgenia V. Kompantseva made a substantial contribution to the concept of the article; collected and analysed research publications. Asya Yu. Ayrapetova collected and analysed research publications, edited the manuscript. Anna S. Saushkina drafted and critically revised the manuscript.

1. Вельмяйкина ЕИ. Фармакогностическое исследование эхинацеи пурпурной как источника иммуномодулирующих лекарственных средств: автореф. дис. … канд. фарм. наук. Самара; 2013.

2. Там же

3. Преловская СЗ. Фармакогностическая характеристика Artemisia subviscosa Turcz. ex Bess. и Artemisia santolinifolia Turcz. ex Bess. и разработка лекарственных средств на их основе: автореф. дис. … канд. фарм. наук. Улан-Удэ; 2020.

4. Там же.

5. Старчак ЮА. Фармакогностическое изучение растений рода Тимьян (Thymus L.) как перспективного источника получения фитопрепаратов: дис. … д-ра фарм. наук. Самара; 2016.
Давитавян НА. Разработка технологии и нормирование качества жидкого и сухого экстрактов травы стальника полевого: автореферат дис. … канд. фармацевт. наук. Пятигорск; 2007.

6. Старчак ЮА. Фармакогностическое изучение растений рода Тимьян (Thymus L.) как перспективного источника получения фитопрепаратов: дис. … д-ра фарм. наук. Самара; 2016.

Список литературы

1. Каримов ОХ, Колчина ГЮ, Тептерева ГА, Четвертнева ИА, Каримов ЭХ, Бадретдинов АР. Исследование реакционной способности производных коричной кислоты — предшественников лигнина. Тонкие химические технологии. 2020;15(4):7–13. https://doi.org/10.32362/2410-6593-2020-15-4-7-13

2. Марахова АИ. Физико-химический анализ фенольных соединений лекарственного растительного сырья. Фармация. 2009;(3):52–5. EDN: KPYHWB

3. Куркин ВА. Актуальные аспекты стандартизации сырья и препаратов, содержащих фенольные соединения. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств. 2022;12(2):127–41. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2022-12-2-127-141

4. Жукова ОЛ, Абрамов АА, Даргаева ТД, Маркарян АА. Изучение фенольного состава подземных органов сабельника болотного. Вестник Московского университета. Серия 2: Химия. 2006;47(5):342–5. EDN: JVHDQN

5. Костикова ВА. Исследование фенольных соединений в растениях рода Spiraea L. Дальнего Востока России методами высокоэффективной жидкостной хроматографии. Вестник Тамбовского университета. 2013;18(3):783–9. EDN: PWMJKB

6. Ажикова АК. Количественное определение гидроксикоричных кислот в листьях гинкго двулопастного (Ginkgo biloba L.). В кн.: Роль метаболомики в совершенствовании биотехнологических средств производства по направлению «Метаболомика и качество жизни». II Международная научная конференция. М.; 2019. С. 56–60. EDN: CEYFTO

7. Куркин ВА, Азнагулова АВ. Фитохимическое исследование надземной части одуванчика лекарственного. Химия растительного сырья. 2017;(1):99–105. https://doi.org/10.14258/jcprm.2017011027

8. Звездина ЕВ, Шейченко ОП. Исследования по стандартизации травы змееголовника молдавского (Dracocephalum moldavica L.). Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2019;22(4):7–12. https://doi.org/10.29296/25877313-2019-04-02

9. Алексеева ЛИ, Болотник ЕВ. Розмариновая кислота и антиоксидантная активность Prunella grandiflora и Prunella vulgaris (Lamiaceae). Растительный мир Азиатской России. 2013;(1):121–5. EDN: QAXHML

10. Музафаров ЕН, Эдвардс Д, Чепурнова МА. Состояние фенольного комплекса в растениях арабидопсиса при действии УФ-радиации. Известия Тульского государственного университета. Естественные науки. 2008;(2):216–25. EDN: KAPNJH

11. Гуляев ДК, Белоногова ВД, Мащенко ПС. Разработка методики определения содержания гидроксикоричных кислот в корнях ели обыкновенной. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология, Фармация. 2019;(2):80–6. EDN: BDQMQZ

12. Сайбель ОЛ, Даргаева ТД, Цицилин АН, Дул ВН. Разработка методики количественного анализа биологически активных веществ и оценка динамики их накопления в зависимости от фазы вегетации цикория обыкновенного (Cichorium intybus L.). Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2016;(6):20–4. EDN: WHPTZV

13. Азнагулова АВ, Куркин ВА. Фармакогностическое изучение травы одуванчика лекарственного как перспективного вида лекарственного растительного сырья. Сеченовский вестник. 2016;(S1):12–3. EDN: WZAIRH

14. Гончаров НФ. Гидроксикоричные кислоты нефармакопейных видов рода боярышник. Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Медицина. Фармация. 2014;(11–1):187–90. EDN: SGSZGB

15. Бубенчикова ВН, Азарова АВ. Стандартизация сырья девясила иволистного (Inula salicina L.) по содержанию гидроксикоричных кислот. Современные проблемы науки и образования. 2014;(2):622–7. EDN: SBWLON

16. Бубенчиков РА, Апойцева АС. Исследование фенольных соединений марьянника серебристоприцветникового и их антиоксидантная активность. В кн.: Фенольные соединения: свойства, активность, инновации. Сборник научных статей по материалам X Международного симпозиума «Фенольные соединения: фундаментальные и прикладные аспекты». М.; 2018. С. 242–6.

17. Молдаванова АЮ, Малютина АЮ. Количественное определение гидроксикоричных кислот в траве горчака ползучего (Acroptilon repens L.). В кн.: Актуальные проблемы химии и образования. Материалы III научно-практической конференции студентов и молодых ученых. Астрахань; 2018. С. 132–4. EDN: UQWOXY

18. Мирович ВМ, Петухова СА, Дударева ЛВ. Накопление фенольных соединений в надземных органах володушки козелецелистной (Bupleurum scorzonerifolium Willd.), произрастающей в Прибайкалье. Acta Biomedica Scientifica. 2017;2(3):78–81. https://doi.org/10.12737/article_59f035ff433f67.34385150

19. Лукашов РИ, Жах АВ, Жаврид АВ. Хроматографический анализ водных, водно-этанольных и этанольных извлечений из подсолнечника однолетнего. В кн.: Инновационные технологии в фармации. Сборник научных трудов. Иркутск; 2019. С. 246–51. EDN: KSRRDE

20. Лаптинская ПК, Сайбель ОЛ. Разработка и валидация методики количественного определения суммы фенольных соединений в зюзника европейского (Lycopus europaeus L.) траве. В кн.: Основные проблемы в современной медицине. Сборник научных трудов по итогам международной научно-практической конференции. Волгоград; 2015. С. 247–51. EDN: UMCHUN

21. Малютина АЮ, Васильченко АВ, Ефременко ЛА. Количественное определение гидроксикоричных кислот в траве сивца лугового (Scabiosa succisa L.). В кн.: Наука и инновации в XXI веке: актуальные вопросы, открытия и достижения. Сборник статей победителей IV Международной научно-практической конференции. Пенза; 2017. С. 279–81. EDN: YQHXVD

22. Гильфанова НИ, Салтыкова ЛД, Щепетова ЕВ. Количественное содержание гидроксикоричных кислот в растительном сырье золотарника канадского. В кн: Актуальные проблемы химии и образования. Материалы III научно-практической конференции студентов и молодых ученых. Астрахань; 2018. С. 132–4. EDN: URTTTM

23. Таланов АА, Корниевская ВГ, Фурса НС. Спектрофотометрическое определение гидроксикоричных кислот в плодах и листьях голубики болотной из различных мест произрастания. В кн. Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск: ПГФА; 2012. С. 122–3.

24. Бубенчикова ВН, Левченко ВН. Разработка и валидация методики количественного определения гидроксикоричных кислот в траве хондриллы ситниковидной. Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Медицина. Фармация. 2015;(16):168–73. EDN: UZCYIZ

25. Загурская ЮВ, Баяндина ИИ. Спектрофотометрический анализ фенольных соединений спиртовых настоев свежих листьев Hypericum perforatum L. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2015;(3):3–9. EDN: TTGQZT

26. Мирович ВМ, Каракаш ЕФ. Содержание флавоноидов и фенолкарбоновых кислот в надземных органах багульника болотного (Ledum palustre L. var. angusicum E. Busch), произрастающего в Прибайкалье. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Ижевск; 2017. С. 46–8.

27. Полухина ТС, Искандарова ГВ. Количественное определение суммы гидроксикоричных кислот в траве донника белого (Мelilotus albus). В кн.: Наука и инновации в XXI веке: актуальные вопросы, открытия и достижения. Сборник статей VIII Международной научно-практической конференции. Пенза; 2018. С. 212–5. EDN: YVCJAE

28. Бубенчикова ВН, Степнова ИВ. Горлюха ястребинковая — перспективный источник биологически активных веществ. Фармация и фармакология. 2018;6(1):33–46. https://doi.org/10.19163/2307-9266-2018-6-1-33-46

29. Жуков ИМ, Шапошникова ЕИ. Разработка методики количественного определения суммы фенольных соединений в сырье шалфея мутовчатого. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск: ПГФА; 2010. С. 61–2.

30. Полухина ТС, Мендеева ЗВ. Изучение количественного содержания суммы гидроксикоричных кислот в траве василистника желтого (Thalictrum flavum L.). В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск: ПГФА; 2018. С. 113–7.

31. Орловская ТВ, Гюльбякова ХН, Гужва НН, Огурцов ЮА. Изучение коры липы сердцелистной с целью создания новых лекарственных средств. Современные проблемы науки и образования. 2013;(2):427. EDN: RXUSKV

32. Губин КВ, Ханина МА. Сравнительный фармакогностический анализ крапивы двудомной (Urtica dioica L.) и крапивы коноплевидной (Urtica cannabina L.). В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск: ПГФА; 2008. С. 26–9.

33. Коломиец НЭ, Шплис ОН. Биологически активные вещества Agastache rugosa (Lamiaceae), интродуцируемого в Западной Сибири. Химия растительного сырья. 2023;(2):133–41. https://doi.org/10.14258/jcprm.20230211640

34. Ханина МГ, Ханина МА, Родин АП. Фенольный комплекс травы Agrimonia pilosa. Вестник Московского государственного областного гуманитарного института. Серия: Медико-биологические науки. 2014;1(1):13. EDN: VXDJWL

35. Зингирова ЗА, Айрапетова АЮ. Количественное определение суммы гидроксикоричных кислот в листьях лука медвежьего Allium ursinum (L.), собранного в Республике Дагестан. В кн.: Беликовские чтения. VI Всероссийская научно-практическая конференция. Пятигорск; 2017. С. 24–7. EDN: XZWEPR

36. Оленников ДН, Танхаева ЛМ. Фенольные соединения листьев Cacalia hastata L. и их количественный анализ. Химия растительного сырья. 2011;(3):143–8. Olennikov DN, Tankhaeva LM. Phenolic compounds of Cacalia hastata L. leaves and their quantitative analysis. Chemistry of Plant Raw Material. 2011;(3):143–8 (In Russ.). EDN: OHSUQT

37. Бондарчук РА, Коломиец НЭ. Исследование фенольных соединений хвоща лесного (Equisetum sylvaticum L.). Бюллетень сибирской медицины. 2011;10(5):25–8. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2011-5-25-28

38. Щербакова ЕА, Коновалов ДА. Фенольные соединения корней и надземных частей синеголовника кавказского и синеголовника плосколистного. Роль метаболомики в совершенствовании биотехнологических средств производства. Сборник трудов II международной научной конференции. М.; 2019. С. 218–22. EDN: KZTEUP

39. Бубенчикова ВН, Боева СА. Разработка и валидация методики количественного определения суммы гидроксикоричных кислот в траве Galinsoga parviflora. Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Медицина. Фармация. 2013;(25–1):80–5. EDN: SGSWSH

40. Валов РИ, Ханина МА. Некоторые результаты фармакогностического исследования хамериона узколистного (Chamerion angustifolium (L.) Holib.). В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск: ПГФА; 2008. С. 8–10.

41. Копытько ЯФ, Даргаева ТД, Рендюк ТД. Состав травы короставника полевого (Knautia arvensis L.). Химико-фармацевтический журнал. 2020;54(7):41–8. https://doi.org/10.30906/0023-1134-2020-54-7-41-48

42. Гарсия ЕР, Поздняков ДИ, Шамилов АА, Логвиненко ЛА, Коновалов ДА. Стандартизация и оценка антиоксидантной активности травы татарника колючего. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2020;23(12):11–7. https://doi.org/10.29296/25877313-2020-12-02

43. Никитина АС, Никитина НВ, Гарсия ЕР, Шамилов АА. Изучение фенольных соединений периллы кустарниковой (Perilla frutescens). В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск; 2018. С. 109–12.

44. Гудкова АА, Перова ИБ, Эллер КИ, Чистякова АС, Сливкин АИ, Сорокина АА. Фенольные соединения в траве горца почечуйного, произрастающего в Воронежской области. Химико-фармацевтический журнал. 2020;54(3):37–41. https://doi.org/10.30906/0023-1134-2020-54-3-37-41

45. Шейхмагомедова ПА, Попова ОИ. Идентификация фенольных соединений и разработка методики количественного определения суммы фенолкарбоновых кислот в траве фацелии пижмолистной (Phacelia tanacetifolia Benth.). Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2022;25(12):44–50. https://doi.org/10.29296/25877313-2022-12-07

46. Никитина АС, Феськов СА, Гарсия ЕР, Шамилов АА, Никитина НВ. Изучение фенольных соединений листьев розмарина лекарственного (Rosmarinus officinalis L.) из коллекции Никитского ботанического сада. В кн.: Сборник научных трудов Государственного Никитского ботанического сада. 2018;146:201–4. https://doi.org/10.25684/NBG.scbook.146.2018.32

47. Крымова АА, Ушакова ЛС, Попова ОИ. Определение некоторых групп биологически активных веществ в листьях Salvia splendens. В кн.: Современные достижения фармацевтической науки и практики. Материалы международной конференции. Витебск: ВГМУ; 2019. С. 81–3. EDN: JAIYCG

48. Сулейманова ФШ, Нестерова ОВ, Аверцева ИН, Решетняк ВЮ. Разработка и валидация методики количественного определения фенолкарбоновых (гидроксикоричных) кислот в траве золотарника канадского (Solidago canadensis L.). Химическая технология. 2019;20(6):252–6. https://doi.org/10.31044/1684-5811-2019-20-6-252-256

49. Никитина ВФ. Определение количественного содержания оксикоричных кислот в стебле золотарника канадского. В кн.: Современные научные исследования: актуальные вопросы, достижения, инновации. Сборник статей X Международной научно-практической конференции. Пенза; 2020. С. 24–6. EDN: BUFEGB

50. Курдюков ЕЕ, Водопьянова ОА, Митишев АВ, Моисеев ЯП, Семенова ЕФ. Методика количественного определения суммы фенилпропаноидов в сырье стевии. Химия растительного сырья. 2020;(3):115–21. https://doi.org/10.14258/jcprm.2020037141

51. Матющенко НВ. Влияние условий сушки на содержание флавоноидов и гидроксикоричных кислот в листьях крапивы узколистной. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск: ПГФА; 2012. С. 78–9.

52. Тринеева ОВ, Сафонова ЕФ, Сливкин АИ, Воропаева СВ. Способ спектрофотометрического количественного определения в листьях крапивы двудомной при совместном присутствии хлорофилла, каротиноидов и гидроксикоричных кислот. Патент Российской Федерации № 2531940; 2014. EDN: XZQETQ

53. Андреева ВЮ, Калинкина ГИ, Ли ВВ. Разработка и валидация методики количественного определения суммы фенолокислот в надземной части зизифоры клиноподиевидной (Ziziphora clinopodioides Lam.). Химия растительного сырья. 2019;(3):161–8. https://doi.org/10.14258/jcprm.2019034683

54. Шамилов АА, Бубенчикова ВН, Гарсия ЕР, Ибаева ХА, Ларский МВ. Разработка и валидация методики количественного определения фенольных соединений и хлорогеновой кислоты в голубики болотной листьях. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2022;25(2):14−23. https://doi.org/10.29296/25877313-2022-02-03

55. Мазепина ЛС, Таланов АА, Месхи НН, Савельева ЕЮ, Оплеснина ОВ, Фурса НС. Количественное определение некоторых групп фенольных соединений в листьях толокнянки обыкновенной. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск: ПГФА; 2009. С. 79–81.

56. Мазепина ЛС, Корниевский ЮИ, Иванов АП, Фурса НС. Сравнительный анализ фенольных соединений грушанки круглолистной, зимолюбки зонтичной и толокнянки обыкновенной — основа их назначения в урологии. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск: ПГФА; 2011. С. 150–1.

57. Онегин СВ, Фурса НС. Количественное определение суммы гидроксикоричных кислот в траве вереска обыкновенного из различных мест произрастания. Российский медико-биологический вестник имени академика И.П. Павлова. 2007;15(3):114–22. EDN: IAPYVV

58. Исайкина НВ, Коломиец НЭ, Абрамец НЮ, Бондарчук РА. Исследование фенольных соединений экстрактов плодов рябины обыкновенной. Химия растительного сырья. 2017;(3):131–9. https://doi.org/10.14258/jcprm.2017031777

59. Кудряшова МЮ, Ханина МА. Количественные показатели фенольного комплекса надземной части лабазника вязолистного (Filipendula ulmaria (Maxim.)). В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск: ПГФА; 2008. С. 55–7.

60. Алмакаева НИ, Панкратова ГА, Семенова ЕВ, Тихонова ЕВ. Динамика накопления гидроксикоричных кислот в листьях артишока. В кн.: Технологии и оборудование химической, биотехнологической и пищевой промышленности. Материалы IX Всероссийской научно-практической конференции студентов, аспирантов и молодых ученых с международным участием. Барнаул; 2016. С. 204–6. EDN: XGBIQP

61. Шплис ОН, Коломиец НЭ, Абрамец НЮ, Каракчиева НИ, Дайбова ЕБ, Бондарчук РА, Жалнина ЛВ. Фенольные соединения лядвенца рогатого, культивируемого в Западной Сибири. В кн.: Роль метаболомики в совершенствовании биотехнологических средств производства. Сборник трудов II международной научной конференции. М.; 2019. С. 228–33. EDN: RXXWAA

62. Тернинко ИИ, Немятых ОД, Сакипова ЗБ, Кулдыркаева ЕВ, Онищенко УЕ. Фитохимические и фармакологические векторы применения Malva sylvestris L. в дерматологической практике. Химико-фармацевтический журнал. 2016;50(12):33–7. https://doi.org/10.30906/0023-1134-2016-50-12-33-37

63. Мишанина АН, Таланов АА, Круглов ДС, Фурса НС. Определение элементного состава, гидроксикоричных кислот и арбутина в листьях черники кавказской и черники обыкновенной. В кн. Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск; ПГФА; 2013. С. 73–5.

64. Нестерова НВ, Самылина ИА, Бобкова НВ, Кузьменко АН, Краснюк ИИ, Евграфов АА. Количественное определение гидроксикоричных кислот и анализ динамики их накопления в листьях яблони лесной. Вестник Московского университета. Серия 2: Химия. 2019;60(1):60–4. EDN: YTIALB

65. Митрофанова ИЮ, Яницкая АВ. Количественное определение гидроксикоричных кислот и динамика их накопления в траве девясила британского. Волгоградский научно-медицинский журнал. 2013;(1):24–6. EDN: THGURP

66. Сергалиев МУ, Самотруева МА, Ахадова ДА, Абдулкадыров ЭИ, Муканалиева АС, Кайырова ЖК. Количественное определение суммы гидроксикоричных кислот в экстракте травы Astragalus physodes L. В кн.: Роль метаболомики в совершенствовании биотехнологических средств производства. Сборник трудов II международной научной конференции. М.; 2019. С. 450–3. EDN: YOFRVH

67. Лукашов РИ. Влияние природы и объемной доли растворителей на экстракцию гидроксикоричных кислот из травы эхинацеи пурпурной. В кн.: Современные проблемы фармакогнозии. Сборник материалов III Межвузовской научно-практической конференции с международным участием, посвященной 100-летию Самарского государственного медицинского университета. Самара; 2018. С. 84–9. EDN: YSHFWH

Об авторах

Е. В. Компанцева

Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Компанцева Евгения Владимировна, д-р фарм. наук, профессор

пр-т Калинина, д. 11, г. Пятигорск, 357532

А. Ю. Айрапетова

Айрапетова Ася Юрьевна, канд. фарм. наук, доцент

пр-т Калинина, д. 11, г. Пятигорск, 357532

А. С. Саушкина

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования Министерства обороны Российской Федерации «Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова» Министерства обороны Российской Федерации
Россия

Саушкина Анна Степановна, канд. фарм. наук, доцент

ул. Академика Лебедева, д. 6, Санкт-Петербург, 194044

Дополнительные файлы

Рецензия

Для цитирования:

For citation:

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.

ISSN 3034-3062 (Print)
ISSN 3034-3453 (Online)

Логин
Пароль
	Запомнить меня
Регистрация нового пользователя Забыли Ваш пароль?

Войти

Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств

Определение гидроксикоричных кислот в растительном сырье спектрофотометрическим методом. Часть 1. Прямая спектрофотометрия (обзор)

Полный текст:

Резюме

Ключевые слова

Для цитирования:

For citation:

ВВЕДЕНИЕ

ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Список литературы

Об авторах

Дополнительные файлы

Рецензия

Для цитирования:

For citation:

Использование куки-файлов