Алкалоиды термопсиса: обзор методов количественного определения

ВВЕДЕНИЕ. Основными алкалоидами травы термопсиса ланцетного являются термопсин (N-метилцитизин), пахикарпин и анагирин; в семенах преобладает цитизин, применяемый для лечения табачной зависимости. Различия в токсичности и фармакологической активности индивидуальных алкалоидов требуют не только контроля их общей суммы, но и мониторинга содержания каждого из них.

ЦЕЛЬ. Оценка перспективности применения отдельных аналитических методов для количественного определения алкалоидов термопсиса.

ОБСУЖДЕНИЕ. Фармакопейный титриметрический метод является трудоемким, длительным, недостаточно точным, поскольку определение конечной точки титрования сопряжено с существенной погрешностью; требует использования токсичных растворителей и может быть использован только для определения суммы алкалоидов без их дифференциации. Спектрофотометрические методы не позволяют надежно определять индивидуальные алкалоиды из-за недостаточной селективности (наложение спектров отдельных алкалоидов), результаты чувствительны к условиям пробоподготовки. Наиболее надежными инструментальными методами для качественного и количественного анализа травы термопсиса являются тонкослойная хроматография и высокоэффективная жидкостная хроматография.

ВЫВОДЫ. В фармакопейном анализе для разделения и количественного определения индивидуальных алкалоидов (идентификации цитизина и термопсина), а также для идентификации примесей семян термопсиса в лекарственных препаратах, не предназначенных для лечения табачной зависимости, могут быть использованы методы тонкослойной и высокоэффективной жидкостной хроматографии.

1. Горелов АВ, Орлова СН, Усенко ДВ и др. Результаты Всероссийского многоцентрового исследования применения комбинированного препарата Коделак® Бронхо у пациентов с продуктивным кашлем. Инфекционные болезни: Новости. Мнения. Обучение. 2024;13(4):139–49.

2. Kakhramanova SD, Bokov DO, Rendyuk TD, et al. Evaluation of the nomenclature of herbal expectorants on Russian pharmaceutical market: current status and future prospects. Systematic Reviews in Pharmacy. 2020;11(6):196–205. EDN: SREGOQ

3. Liu CF, Tan JG, Wu XY, et al. Isoflavones and stilbenes with antifungal activities from the seeds of Thermopsis lanceolata R. Br. J Agric Food Chem. 2025;73(19):12014–25. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.5c00617

4. Namdar D, Mulder PP, Ben-Simchon E, et al. New analytical approach to quinolizidine alkaloids and their assumed biosynthesis pathways in lupin seeds. Toxins. 2024;16(3):163. https://doi.org/10.3390/toxins16030163

5. Ning F, Zhu H, Yan H, et al. Separation and purification of quinolyridine alkaloids from seeds of Thermopsis lanceolata R. Br. by conventional and pH-zone-refining counter-current chromatography. J Sep Sci. 2023;46(16):2300053. https://doi.org/10.1002/jssc.202300053

6. Оковитый СВ, Марьюшкина ВС, Суханов ДС, Селизарова НО. Фармакологические подходы к рациональному выбору комбинированных мукоактивных препаратов. Лечащий врач. 2020;(12):41–5.

7. Abdiniyazova GJ, Madiyarova NO. Medicinal value of plants Thermopsis alterniflora Regel &Scmalsh. Journal of Modern Educational Achievements. 2023;5(5):498–501.

8. Dorjee T, Gao F, Zhou Y. The complete chloroplast genome of Thermopsis lanceolata: genome structure and its phylogenetic relationships within the family Fabaceae. Mitochondrial DNA Part B. 2022;7(12):2076–80. https://doi.org/10.1080/23802359.2022.2154623

9. Олейникова ТА. Региональный фармацевтический рынок отхаркивающих лекарственных препаратов: структура и оценка доступности. Региональный вестник. 2020;(3):85–7.

10. Рябова ОА. Препараты растительного происхождения, обладающие противокашлевым действием, в ассортименте аптек Иркутской области. В кн.: Природные соединения и здоровье человека. Иркутск; 2020. С. 127–30.

11. Grudzinskaya LM, Gemejiyeva NG, Karzhaubekova ZZ. The Kazakhstan medicinal flora survey in a leading families volume. Bulletin of Karaganda University. 2020;100(4):39– 51. https://doi.org/10.31489/2020bmg4/39-51

12. Wu XY, Tan JG, Liu CF, et al. Chemical constituents of the herb of Thermopsis lanceolata R. Br. and their stimulation of seed germination of Triticum aestivum L. Phytochemistry. 2025;236:114512. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2025.114512

13. Zhang P, An Q, Yi P, et al. Thermlanseedlines A–G, seven thermopsine-based alkaloids with antiviral and insecticidal activities from the seeds of Thermopsis lanceolata R. Br. Fitoterapia. 2022;158:105140. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2022.105140

14. Zhang P, Zou JB, An Q, et al. Two new cytisine-type alkaloids from the seeds of Thermopsis lanceolata. J Asian Nat Prod Res. 2022;24(12):1141–9. https://doi.org/10.1080/10286020.2021.2020759

15. Wang X, Yang J, Huang P, et al. Cytisine: state of the art in pharmacological activities and pharmacokinetics. Biomed Pharmacother. 2024;171:116210. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2024.116210

16. Bucci AM, Bustos AY, Frias MDLA, Ledesma AE. Characterization of interaction between low-density lipoprotein (LDL) and alkaloid N-methyl cytisine: The potential protective effect on lipid oxidation. Chemistry Select. 2025;10(7):e202402990. https://doi.org/10.1002/slct.202402990

17. Peng H, Yang F, Luo Y, et al. Identification and content determination of toxic alkaloids in Aconitum brachypodum. Matrix Sci Pharma. 2023;7(1):17–21. https://doi.org/10.4103/mtsp.mtsp_6_23

18. Gadhvi K, Modi K, Shah M. Quantitative analysis of cytisine in Thermopsis alterniflorae using high-performance thinlayer chromatography. Int J Curr Pharm Res. 2023;15(2):33–5. https://doi.org/10.22159/ijcpr.2023v15i2.2087

19. Моргунов ИМ, Антонова НП, Шефер ЕП и др. Применение метода ВЭТСХ-денситометрии в количественном определении суммы алкалоидов термопсиса экстракта сухого. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств. 2023;13(2):173–83.

20. Ibrayev MK, Nurkenov OA, Rakhimberlinova ZB, et al. Synthesis, properties and spatial structure of 4-[(3, 5-Dimethyl-1, 2-oxazol-4-yl) sulfonyl] cytosine. Plants. 2022;12(1):137. https://doi.org/10.3390/plants12010137

21. Сандрюхина МВ, Никитина ТГ. Определение содержания хинолизидиновых алкалоидов в семенах люпина дикорастущего и термопсиса ланцетного методами капиллярного электрофореза и ВЭЖХ. В кн.: Разработка лекарственных средств — традиции и перспективы. Томск; 2021. С. 60–62.

22. Yang Y, Hu L, Chen T, et al. Chemical and biological investigations of antiviral agents against plant viruses conducted in China in the 21st century. Genes. 2024;15(12):1654. https://doi.org/10.3390/genes15121654

23. Yuan S, Ibrahim IAA, Ren R. Anti-urolithiatic activi-ty of daidzin in ethylene glycol-induced urolithiasis in rats. Appl Biochem Biotechnol. 2023;195(2):905–18. https://doi.org/10.1007/s12010-022-04124-y

24. Bandopadhyay R, Rathod SSS, Mishra A. Enzyme-linked immunosorbent assay. In: Analysis of naturally occurring food toxins of plant origin. CRC Press; 2022. P. 215–44.

25. Li X, Guo L, Sun M, et al. Broad-specificity immunochromatographic strip assay for alkaloids: From hapten design to antibody recognition. Anal Chem. 2025;97(34):18509–18. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.5c02224

26. Jia X, Zhang H, Jiang X, et al. Profiling and quantitation of alkaloids in different parts of Sophora alopecuroides L. extracts by high-performance liquid chromatography with electrospray ionisation ion mobility spectrometry detection. Phytochem Anal. 2021;32(6):1003–10. https://doi.org/10.1002/pca.3042

27. Hoyer C, Ostermann AI, Kappenstein O. Validation of multi-analyte methods for the determination of quinolizidine alkaloids in food and feed with LC-MS/MS–results of a collaborative method validation study. In: 11th International Symposium on recent advances in food analysis. Prague; 2024.

28. Nowak K, Szpot P, Zawadzki M, Chłopaś-Konowałek A. Method for determination of cytisine in post-mortem biological matrices and its application to two forensic cases. Forensic Toxicol. 2025;43(2):385–94. https://doi.org/10.1007/s11419-024-00710-3

29. Terzi H, Yıldız M, Yıldız SH, et al. Organ-specific antioxidant capacities and cytotoxic effects of Thermopsis turcica extracts in breast cancer. İstanbul J Pharm. 2024;54(1):80–8. https://doi.org/10.26650/IstanbulJPharm.2024.1354832