<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="review-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">vedomostiregmed</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Regulatory Research and Medicine Evaluation</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">3034-3062</issn><issn pub-type="epub">3034-3453</issn><publisher><publisher-name>Federal State Budgetary Institution ‘Scientific Centre for Expert Evaluation of Medicinal Products’ of the Ministry of Health of the Russian Federation (FSBI ‘SCEEMP’)</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.30895/1991-2919-2024-14-2-196-206</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">vedomostiregmed-585</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>ИНСТРУМЕНТАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>INSTRUMENTAL METHODS</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Определение гидроксикоричных кислот в растительном сырье спектрофотометрическим методом. Часть 2. Определение гидроксикоричных кислот в присутствии полифенольных соединений (обзор)</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Spectrophotometric Determination of Hydroxycinnamic Acids in Herbal Drugs. Part 2. Determination of Hydroxycinnamic Acids in the Presence of Polyphenolic Compounds (Review)</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-0534-1651</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Компанцева</surname><given-names>Е. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Kompantseva</surname><given-names>E. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Компанцева Евгения Владимировна, д-р фарм. наук, профессор</p><p>пр-т Калинина, д. 11, Пятигорск, 357532</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Eugenia V. Kompantseva, Dr. Sci. (Pharm.), Professor</p><p>11 Kalinin Ave, Pyatigorsk 357532</p></bio><email xlink:type="simple">dskompanceva@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-8238-5092</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Саушкина</surname><given-names>А. С.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Saushkina</surname><given-names>A. S.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Саушкина Анна Степановна, канд. фарм. наук, доцент</p><p>ул. Академика Лебедева, д. 6Ж, Санкт-Петербург, 194044</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Anna S. Saushkina, Cand. Sci. (Pharm.), Associate Professor</p><p>6 Academician Lebedev St., St Petersburg 194044</p></bio><email xlink:type="simple">annasaushkina@list.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-4959-5677</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Айрапетова</surname><given-names>А. Ю.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Ayrapetova</surname><given-names>A. Yu.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Айрапетова Ася Юрьевна, канд. фарм. наук, доцент</p><p>пр-т Калинина, д. 11, Пятигорск, 357532</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Asya Yu. Ayrapetova, Cand. Sci. (Pharm.), Associate Professor</p><p>11 Kalinin Ave, Pyatigorsk 357532</p></bio><email xlink:type="simple">asyapgfa@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Pyatigorsk Medical and Pharmaceutical Institute, Branch of Volgograd State Medical University</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-2"><aff xml:lang="ru"><institution>Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова» Министерства обороны Российской Федерации</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>S.M. Kirov Military Medical Academy</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2024</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>05</day><month>04</month><year>2024</year></pub-date><volume>14</volume><issue>2</issue><issue-title>Качество лекарственных растительных препаратов: новые аспекты и решения</issue-title><fpage>196</fpage><lpage>206</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Компанцева Е.В., Саушкина А.С., Айрапетова А.Ю., 2024</copyright-statement><copyright-year>2024</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Компанцева Е.В., Саушкина А.С., Айрапетова А.Ю.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Kompantseva E.V., Saushkina A.S., Ayrapetova A.Y.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/585">https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/585</self-uri><abstract><sec><title>ВВЕДЕНИЕ</title><p>ВВЕДЕНИЕ. Определение суммы гидроксикоричных кислот в лекарственном растительном сырье в присутствии смеси полифенольных соединений методом прямой спектрофотометрии без предварительной пробоподготовки затруднено, поскольку полифенольные соединения разных классов имеют ярко выраженные налагающиеся полосы поглощения практически в одной и той же области ультрафиолетового спектра.</p></sec><sec><title>ЦЕЛЬ</title><p>ЦЕЛЬ. Оценка возможности определения количественного содержания гидроксикоричных кислот в присутствии других полифенольных соединений в лекарственном растительном сырье методом спектрофотометрии.</p></sec><sec><title>ОБСУЖДЕНИЕ</title><p>ОБСУЖДЕНИЕ. Проанализированы данные литературы по методикам спектрофотометрического определения количественного содержания гидроксикоричных кислот, основанные на предварительном разделении или химической модификации полифенольных соединений (хромато-спектрофотометрический и экстракционно-спектрофотометрический методы, спектрофотометрический метод с использованием реактива Арнова и др.). Использование такой пробоподготовки позволяет достигнуть разрешения полос поглощения в спектрах полифенольных соединений. Результаты оценки характеристических параметров рассмотренных методик (селективность, чувствительность, трудоемкость и др.) могут служить основой поиска подходов к количественному определению гидроксикоричных кислот в растительных объектах.</p></sec><sec><title>ВЫВОДЫ</title><p>ВЫВОДЫ. Для определения количественного содержания гидроксикоричных кислот в смесях полифенольных соединений возможно использовать специальную пробоподготовку (хромато-спектрофотометрический и экстракционно-спектрофотометрический методы) или химическую модификацию исходных соединений. Может быть рекомендовано применение специфической математической обработки полученных спектров (метод производной фотометрии и метод Фирордта). Тем не менее  даже  при  использовании  указанных подходов не всегда удается добиться повышения селективности метода, что требует дальнейшего совершенствования имеющихся и разработки новых методик количественного анализа гидроксикоричных кислот.</p></sec></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><sec><title>INTRODUCTION</title><p>INTRODUCTION. Polyphenolic compounds of various classes have pronounced absorption bands overlapping in almost the same ultraviolet region. This superposition of bands complicates the quantification of total hydroxycinnamic acids in herbal drugs by direct spectrophotometry without additional sample preparation.</p></sec><sec><title>AIM</title><p>AIM. This study aimed to establish the possibility of quantifying hydroxycinnamic acids in herbal drugs by spectrophotometry in the presence of other polyphenolic compounds.</p></sec><sec><title>DISCUSSION</title><p>DISCUSSION.  This  review  analyses  publications   on   analytical   procedures   for the spectrophotometric quantification of hydroxycinnamic acids that are based on the preliminary separation or chemical modification of polyphenolic compounds (combining the use of spectrophotometry, chromatography, extraction, Arnow’s reagent, etc.). The described sample preparation can help to resolve absorption bands in the spectra of polyphenolic compounds. The results of assessing the characteristic parameters of these analytical procedures (selectivity, sensitivity, labour intensity, etc.) can serve as a basis for searching novel approaches to the quantitative determination of hydroxycinnamic acids in plants.</p></sec><sec><title>CONCLUSIONS</title><p>CONCLUSIONS. To determine the content of hydroxycinnamic acids in mixtures of polyphenolic compounds, analysts may use special sample preparation (combining spectrophotometry with chromatography and extraction) or chemical modification of the initial compounds. The acquired spectra could benefit from specific mathematical processing (derivative photometry and Vierordt’s method). However, even with the abovementioned approaches, it may not always be possible to increase the selectivity of an analytical procedure. Therefore, there is a need to further improve existing analytical procedures for the quantification of hydroxycinnamic acids and develop new ones.</p></sec></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>гидроксикоричные кислоты</kwd><kwd>фенолкарбоновые кислоты</kwd><kwd>кофейная кислота</kwd><kwd>коричная кислота</kwd><kwd>хлорогеновая кислота</kwd><kwd>цикориевая кислота</kwd><kwd>лекарственное растительное сырье</kwd><kwd>количественное определение</kwd><kwd>спектрофотометрия</kwd><kwd>хромато-спектрофотометрия</kwd><kwd>экстракционная   спектрофотометрия</kwd><kwd>реактив Арнова</kwd><kwd>дифференциальная спектрофотометрия</kwd><kwd>полифенольные соединения</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>hydroxycinnamic acids</kwd><kwd>phenolcarboxylic acids</kwd><kwd>caffeic acid</kwd><kwd>cinnamic acid</kwd><kwd>chlorogenic acid</kwd><kwd>chicoric acid</kwd><kwd>herbal drugs</kwd><kwd>quantitative determination</kwd><kwd>spectrophotometry</kwd><kwd>chromatography–spectrometry</kwd><kwd>extraction spectrophotometry</kwd><kwd>Arnow’s reagent</kwd><kwd>differential spectrophotometry</kwd><kwd>polyphenolic compounds</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><sec><title>ВВЕДЕНИЕ</title><p>Основной трудностью количественного определения гидроксикоричных кислот (ГКК) в растительных объектах является то, что полифенольные соединения разных классов имеют ярко выраженные полосы поглощения практически в одной и той же области ультрафиолетового спектра, что делает невозможным или затруднительным их определение в растительном сырье методом прямой спектрофотометрии (СФМ). Таким образом, прямую СФМ заменяют специфическими вариантами метода (хромато-СФМ, экстракционной СФМ), комбинируют дифференциальную СФМ и расчетные методы, проводят предварительную пробоподготовку путем химической модификации биологически активных соединений (БАС) [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. В зарубежные фармакопеи введены методики с использованием реактива Арнова (водный раствор нитрита натрия и молибдата натрия). Так, согласно требованиям Европейской фармакопеи1 молибдат аммония в смеси с нитритом натрия используется при определении суммы ГКК в растительном сырье подорожника ланцетолистного (Plantago lanceolata L.), белокудренника черного (Ballota nigra L.), ясеня обыкновенного (Fraxinus excelsior L.) и розмарина лекарственного (Rosmarinus officinalis L.). В Государственной фармакопее Республики Беларусь2 (ГФ РБ) с помощью реактива Арнова определяется сумма производных фенолокислот или ГКК в корнях одуванчика лекарственного (Taraxacum officinale Wigg.), в листьях и траве мелиссы лекарственной (Melissa officinalis L.), створках фасоли обыкновенной (Phaseolus vulgaris L.). Кроме того, в ГФ РБ для определения суммы ГКК в траве эхинацеи пурпурной (Echinaceae purpureae (L.) Moench.) используется сочетание методов бумажной хроматографии (БХ) и СФМ3. По нашему мнению, представляет интерес систематизация данных по использованию различных вариантов СФМ при изучении ГКК в растительном сырье.</p><p>Материалом для написания настоящего обзора служили данные источников отечественной научной литературы (научные журналы и публикации научных конференций) за период 2007–2023 гг. Семантический поиск был проведен с использованием информационно-поисковых (PubMed, GoogleScholar), библиотечных баз данных (eLIBRARY.RU, КиберЛенинка) и приложения ResearchGate.</p><p>Цель работы — оценка возможности определения количественного содержания гидроксикоричных кислот в присутствии других полифенольных соединений в лекарственном растительном сырье методом спектрофотометрии.</p></sec><sec><title>ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ</title></sec><sec><title>Метод хромато-спектрофотометрии</title><p>Одним из первых для определения ГКК в растительном сырье описан метод хромато-спектрофотометрии, согласно которому для отделения суммы ГКК используются различные варианты хроматографии. Наиболее простые и доступные способы разделения основаны на использовании БХ и тонкослойной (ТСХ) хроматографии с разными сорбентами.</p><p>Примером использования хромато-СФМ является методика определения ГКК в нескольких видах медуниц (Pulmonaria officinalis L., P. mollissima A. Kerner, P. obscura Dumort), синяке обыкновенном (Echium vulgare L.) и бруннере сибирской (Brunnera sibirica Steven) [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>]. Растительное сырье подвергали экстракции спиртом этиловым 90% трижды при комнатной температуре, затем дважды при нагревании водяной бане. ГКК в объединенном извлечении разделяли на хроматографической бумаге «Ленинградская средняя» в системе растворителей: кислота уксусная ледяная — вода (2:98 об.:об.). Аналитические длины волн (АДВ) для количественного определения ГКК выбраны сравнением УФ-спектров элюатов и растворов стандартных образцов (СО) ГКК. Для медуниц всех видов количественное определение ГКК проводили по АДВ поглощения хлорогеновой кислоты; для синяка обыкновенного — транс-коричной кислоты; для бруннеры сибирской — кофейной кислоты с помощью градуировочных графиков, построенных с использованием СО этих соединений. В траве Brunnera sibirica Steven содержание суммы ГКК составило 0,63%, в листьях Pulmonaria mollissima A. Kerner, P. obscura Dumort, P. officinalis L. — соответственно 1,53; 2,02; 1,33%, и в Echium vulgare L. — 1,13% [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>].</p><p>Условия определения ГКК в ряде видов растительного сырья методом хромато-СФМ приведены в таблице 1. При использовании данного метода после детектирования хроматограммы с раствором СО отмечают участки на хроматограмме извлечения с зонами, соответствующими проявленным полосам СО, и вырезают их. Из вырезанных участков ГКК элюируют растворителем, элюаты обьединяют и измеряют оптическую плотность в максимуме поглощения доминирующей кислоты.</p><table-wrap id="table-1"><caption><p>Таблица 1. Условия определения гидроксикоричных кислот методом хромато-спектрофотометрии в растительном сырье</p><p>Table 1. Conditions for the determination of hydroxycinnamic acids in herbal drugs by direct spectrophotometry</p><p>Таблица составлена авторами по данным источников литературы / The table is prepared by the authors using data from the referenced sources</p><p>Примечание: «–» — данные отсутствуют* — в пересчете на кофейную кислоту (коф.), коричную кислоту (кор.), хлорогеновую кислоту (хлрг.).** — отсутствуют данные, на какую кислоту ведут пересчет.</p><p>Note. –, no data.* The calculated values are expressed as caffeic acid (caf.), cinnamic acid (cin.), and chlorogenic acid (chl.).** The acid for calculations is not specified.</p></caption><table><tbody><tr><td>Производящее растение
Source plant</td><td>Сырье, г
Herbal drug, g</td><td>Экстрагент, мл
Extraction solvent, mL</td><td>Соотношение сырье (г) : экстрагент (мл)
Herbal drug (g) : extraction solvent (mL)</td><td>Кратность экстракции
Number of extractions</td><td>Температура, ˚С
Temperature, ˚С</td><td>Время, мин
Time, min</td><td>Содержание гидроксикоричных кислот, % *
Hydroxycinnamic acid content, % *</td><td>Литература
References</td></tr><tr><td>Ledum palustre L.</td><td>Побеги
Shoot</td><td>–</td><td>–</td><td>–</td><td>–</td><td>–</td><td>1,7–3,2**</td><td>[3]</td></tr><tr><td>Orthilia secunda L. House</td><td>Трава
Herb</td><td>–</td><td>–</td><td>–</td><td>–</td><td>–</td><td>2,3 хлрг.
(chl.)</td><td>[4]</td></tr><tr><td>Pyrola rotundifolia L.</td><td>Трава
Herb</td><td>–</td><td>–</td><td>–</td><td>–</td><td>–</td><td>0,9 хлрг.
(chl.)</td><td>[4]</td></tr><tr><td>Vaccinium myrtillus L.</td><td>Листья, плоды
Leaf,
fruit</td><td>Последовательная экстракция
Sequential extraction</td><td>Спирт этиловый 90%
Ethanol 90%</td><td>1:30</td><td>1</td><td>20</td><td>1440</td><td>4,5 коф. (листья)
(caf., leaf)
1,48 кор.
(плоды)
(cor., fruit)</td><td>[5]</td></tr><tr><td>Спирт этиловый 80%
Ethanol 80%</td><td>1:20</td><td>1</td><td>100</td><td>30</td></tr><tr><td>Спирт этиловый 70%
Ethanol 70%</td><td>1:20</td><td>1</td><td>100</td><td>30</td></tr><tr><td>Scabiosa comosa Fisch. ex Roem. &amp; Schult.</td><td>Цветки
Flower</td><td>Спирт этиловый 40%
Ethanol 40%</td><td>0,5:50</td><td>2</td><td>100</td><td>45</td><td>0,9 хлрг.
(chl.)</td><td>[6]</td></tr><tr><td>Листья
Leaf</td><td>0,5:25</td><td>15</td><td>0,4 хлрг.
(chl.)</td></tr><tr><td>Scabiosa ochroleuca L.</td><td>Трава
Herb</td><td>Спирт этиловый 40%
Ethanol 40%</td><td>0,5:50</td><td>2</td><td>100</td><td>55</td><td>0,2 хлрг.
(chl.)</td><td>[6]</td></tr><tr><td>0,5:25</td><td>15</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>ГКК из растительного сырья извлекают в основном спиртом этиловым различной концентрации при кратности экстракции от 1 до 3 раз и настаивании как при комнатной температуре, так и на кипящей водяной бане. При комнатной температуре извлечение проводят в течение суток, тогда как при нагревании время экстракции составляет 30–60 мин. Количественное содержание ГКК рассчитывают с использованием градуировочных графиков СО [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>] или значений удельного показателя поглощения ГКК [<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>].</p><p>Для разделения индивидуальных ГКК применяется также прием предварительной очистки суммы ГКК от других сопутствующих соединений. Так, согласно ФС.2.5.0055.15 «Эхинацеи пурпурной трава» (Echinaceae purpureae herba) Государственной фармакопеи Российской Федерации XIV изд. сумму ГКК экстрагируют из сухого сырья спиртом этиловым 95% в присутствии щавелевой кислоты при нагревании на магнитной мешалке в течение 45 мин. Для отделения ГКК от сопутствующих соединений применяют фильтровальную бумагу, хроматографируют восходящим методом в хлороформе. После окончания процесса хроматографирования участки бумаги на линии старта вырезают, помещают в колбу и экстрагируют 0,1 М раствором хлористоводородной кислоты. Содержание суммы фенилпропаноидов вычисляют, используя удельный показатель поглощения СО цикориевой кислоты при 328 нм, равный 782.</p><p>По аналогичной методике определена сумма ГКК в извлечении из травы синюхи голубой (Polemonium caeruleum L.) после очистки извлечения от сопутствующих соединений методом БХ и ТСХ. Содержание суммы ГКК в траве синюхи голубой составляет 1% в пересчете на цикориевую кислоту [<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>]. Таким же образом была определена сумма фенолкарбоновых кислот в траве гравилата городского (Geum urbanum L.), которая в пересчете на хлорогеновую кислоту составила 0,7% [<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>].</p><p>Метод хромато-СФМ является довольно трудоемким и времязатратным из-за многочисленных операций пробоподготовки, связанных с получением извлечений, и последующим хроматографированием.</p><p>В последние годы вместо метода хромато-СФМ используют сочетание ТСХ с видеоденситометрической регистрацией аналитического сигнала (метод планарной хроматографии). Так, этот метод использован для идентификации и количественного определения хлорогеновой кислоты в извлечении из корневищ с корнями любистока лекарственного (Levisticum officinale W.D.G. Koch.). Хроматографирование проведено на пластинках Sorbfil с использованием подвижной фазы: н-бутанол — ледяная уксусная кислота — вода (5:4:1 об.:об.:об). Детектирующий реагент — пары аммиака. Хлорогеновая кислота проявляется в виде пятен темно-коричневого цвета с Rf4 (0,54±0,02). Хроматограммы обработаны с помощью компьютерной программы «Видеоденситометр Sorbfil». Содержание хлорогеновой кислоты в корнях и корневищах любистка лекарственного составило 0,37% [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>].</p></sec><sec><title>Метод экстракционной спектрофотометрии</title><p>Как было показано ранее, количественному определению суммы ГКК в извлечениях из растительного сырья методом прямой СФМ мешают другие производные фенола [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. При этом наибольший вклад в поглощение полученных извлечений в УФ-области вносят флавоноиды. Для преодоления указанного недостатка в работе В.М. Косман с соавт. на примере модельной смеси рутина с кофейной кислотой предложена избирательная экстракция ГКК этилацетатом. Показано, что при рН 2 ГКК экстрагируются этилацетатом до 85%, а в водной фазе остается до 85% рутина [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>].</p><p>Считая данные условия оптимальными для разделения ГКК и флавоноидов, М.С. Ларькина и соавт. при изучении динамики накопления фенолкарбоновых кислот в надземной части василька шероховатого (Centaurea scabiosa L.) получали суммарное водно-спиртовое извлечение, которое затем упаривали до водного остатка и при рН водной фазы, равном 2, извлекали ГКК этилацетатом. Проведенная сравнительная оценка результатов количественного определения суммы ГКК в пересчете на кофейную кислоту методами прямой и экстракционной СФМ (экстрагент — спирт этиловый 70%) показала, что содержание суммы ГКК в надземной части василька шероховатого составляет, соответственно, 4,9±0,5 и 1,6±0,5% [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>]. Очевидно, что данный метод приемлем для анализа ГКК в присутствии гидрофильных флавоноидов, таких как рутин. Вполне возможно, что в предлагаемых условиях нерастворимые в воде флавоноиды будут также хорошо экстрагироваться этилацетатом.</p><p>Е.Г. Санниковой с соавт. подобная методика использована для определения суммы ГКК в побегах и коре ивы трехтычинковой (Salix triandra L.) и ивы белой (Salix alba L.), в коре ивы пурпурной (Salix purpurea L.). Содержание суммы ГКК пересчитывали на доминирующий компонент (табл. 2) [<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>].</p><table-wrap id="table-2"><caption><p>Таблица 2. Результаты количественного определения суммы гидроксикоричных кислот методом экстракционной спектрофотометрии</p><p>Table 2. Results of the quantitative determination of total hydroxycinnamic acids by extraction spectrophotometry</p><p>Таблица составлена авторами по данным источников литературы / The table is prepared by the authors using data from the referenced sources</p></caption><table><tbody><tr><td>Растительное сырье (производящее растение)
Herbal drug (source plant)</td><td>Содержание суммы гидроксикоричных кислот, %
Total hydroxycinnamic acids, %</td><td>Кислота, на которую производили пересчет
Acid for calculations</td><td>Литература
References</td></tr><tr><td>Кора ивы белой (Sálix álba L.)
White willow bark</td><td>0,27</td><td>Феруловая
Ferulic acid</td><td>[13]</td></tr><tr><td>Побеги ивы белой (Sálix álba L.)
White willow shoot</td><td>0,76</td><td>Феруловая
Ferulic acid</td><td>[13]</td></tr><tr><td>Кора ивы трехтычинковой (Salix triandra L.)
Almond willow bark</td><td>0,29</td><td>Феруловая
Ferulic acid</td><td>[14]</td></tr><tr><td>Побеги ивы трехтычинковой (Salix triandra L.)
Almond willow shoot</td><td>0,43</td><td>Хлорогеновая
Chlorogenic acid</td><td>[14]</td></tr><tr><td>Кора ивы пурпурной (Salix purpurea L.)
Purple willow bark</td><td>0,53</td><td>Кофейная
Caffeic acid</td><td>[13]</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>Методом экстракционной СФМ при 325 нм определена сумма ГКК в пересчете на кофейную кислоту в листьях 4 видов рода Rhododendron подсекции Rhodorastra. Содержание ГКК составило 0,5–1,0% [<xref ref-type="bibr" rid="cit15">15</xref>].</p><p>Описанный метод не получил широкого распространения, поскольку многостадиен, достаточно длителен, требует использования токсического растворителя и характеризуется значительной потерей определяемых веществ [<xref ref-type="bibr" rid="cit15">15</xref>].</p></sec><sec><title>Расчетный метод спектрофотометрического определения</title><p>Расчетный метод (метод Фирордта) использован для определения суммарного содержания флавоноидов, ГКК и изофлавоноидов в одной навеске травы стальника посевного (Ononis arvensis L.). Для исключения влияния поглощения флавоноидов при определении суммы ГКК в растительном сырье А.М. Сампиев и соавт. исходили из принципа аддитивности суммы оптических плотностей БАС при АДВ. Разработанная методика включает использование методов дифференциальной спектрофотометрии для определения суммы флавоноидов по реакции комплексообразования с алюминия(III) хлоридом в пересчете на доминирующий флавоноид и прямой СФМ для суммы ГКК при длине волны 325 нм. С этой целью авторы рассчитывали предполагаемую оптическую плотность флавоноидов при длине волны 325 нм по предварительно определенному содержанию суммы флавоноидов в сырье и удельному показателю поглощения СО флавоноида при 325 нм. Аналогичным образом расчетный метод использован и для определения содержания изофлавоноидов при длине волны 260 нм. Предварительно были рассчитаны значения удельных показателей поглощения соответствующих СО флавоноидов, ГКК и изофлавоноидов при всех АДВ [<xref ref-type="bibr" rid="cit16">16</xref>].</p><p>Расчетным способом определено количественное содержание суммы ГКК столбиков с рыльцами кукурузы (Zea mays L.) и травы посконника конопляного (Eupatorium cannabinum L.). Сумма ГКК (хлорогеновая, феруловая, кофейная) в кукурузных рыльцах составила 1,96 [<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>] и 3,85% [<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>]; в траве посконника конопляного — 2,22%5.</p><p>На наш взгляд, описанный подход к анализу содержания ГКК в растительном сырье имеет недостатки. В частности, достоверный результат может быть получен только в том случае, если известно, что растительное сырье содержит только флавоноиды, способные вступать в реакцию комплексообразования с алюминия(III) хлоридом. Если в растительном сырье содержатся флавоноиды, которые не взаимодействуют с данным реактивом, рассчитанное содержание ГКК будет иметь некорректное значение. Кроме того, для выполнения анализа необходимо наличие СО флавоноида, на который ведется пересчет количественного содержания, или рассчитанное значение удельного показателя поглощения СО в максимуме поглощения ГКК.</p></sec><sec><title>Метод спектрофотометрии с использованием реактива Арнова</title><p>Для исключения влияния сопутствующих соединений на результаты количественного определения ГКК в извлечениях из растительного сырья некоторые авторы использовали СФМ определение после химической модификации извлечений [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. Для определения ГКК в растительном сырье применяется метод, основанный на реакции фенольных соединений с реактивом Арнова (10,0 г молибдата натрия, 10,0 г нитрита натрия в 100,0 мл воды). Общее содержание ГКК устанавливают по продуктам их окисления в области 490–550 нм.</p><p>В Европейской фармакопее и ГФ РБ6, а также в некоторых научных работах [19–25] описано применение реактива Арнова для определения суммы фенолкарбоновых кислот. В исследованиях Ю.А. Старчак7 данный реактив использован при разработке методики дифференциальной СФМ для количественного определения ГКК в растениях рода тимьян (Thymus). С этой целью параллельно измеряют оптическую плотность продуктов реакции ГКК в извлечениях из растительного сырья и СО розмариновой кислоты с реактивом Арнова при длине волны 505 нм (метод дифференциальной СФМ). Для расчетов количественного содержания ГКК используют величину удельного показателя поглощения продукта реакции СО розмариновой кислоты с указанными реактивами (равен 400). Выбор СО и АДВ обусловлен совпадением максимумов спектров поглощения продуктов взаимодействия ГКК спиртовых извлечений из травы растений рода тимьян и раствора СО розмариновой кислоты с реактивом Арнова при длине волны 505 нм [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. Одновременно определена сумма ГКК в извлечении из растений рода тимьян методом прямой СФМ (табл. 3).</p><table-wrap id="table-3"><caption><p>Таблица 3. Содержание суммы гидроксикоричных кислот в сырье растений рода тимьян (Thymus) при определении различными методами спектрофотометрии</p><p>Table 3. Total hydroxycinnamic acids in Thymus genus species determined by spectrophotometric methods</p><p>Таблица составлена авторами по данным8 / The table is prepared by the authors using a doctoral thesis8</p></caption><table><tbody><tr><td>Растение
Plant</td><td>Содержание суммы гидроксикоричных кислот, %
Total hydroxycinnamic acids, %</td></tr><tr><td>Метод прямой спектрофотометрии
Direct spectrophotometry</td><td>Метод дифференциальной спектрофотометрии
Differential spectrophotometry</td></tr><tr><td>Тимьян Палласа (Thymus pallasianus Heinr. Braun)
Pallas’ thyme</td><td>7,11±0,27</td><td>2,76±0,07</td></tr><tr><td>Тимьян меловой (Thymus cretaceus Klok. et Schost.)
Cretaceous thyme</td><td>6,23±0,13</td><td>4,01±0,12</td></tr><tr><td>Тимьян ползучий (Thymus serpyllum L.)
Wild thyme</td><td>4,86±0,19</td><td>2,26±0,09</td></tr><tr><td>Тимьян блошиный (Thymus pulegioides L.)
Broad-leaved thyme</td><td>10,83±0,34</td><td>6,34±0,13</td></tr><tr><td>Тимьян Маршалла (Thymus marchalianii Willd.)
Marschall’s thyme</td><td>5,26±0,19</td><td>3,27±0,11</td></tr><tr><td>Тимьян двуликий (Thymus dimorphus Klok. еt Shost.)
Dimorphous thyme</td><td>3,27±0,01</td><td>1,04±0,04</td></tr><tr><td>Тимьян Черняева (Thymus tschernjajevii. Кlok. et Shost.)
Czernajew’s thyme</td><td>4,97±0,16</td><td>3,26±0,12</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>Содержание суммы ГКК, определенное методом прямой СФМ, составляет 3,27–10,83%. Метод дифференциальной СФМ по реакции с реактивом Арнова показывает значительно меньшее содержание суммы ГКК (1,04–6,34%) в тех же объектах. Авторы методики отмечают расхождение в результатах, что связано с низкой избирательностью методики прямой СФМ. Суммарное поглощение в этой области спектра объясняется содержанием в растениях не только ГКК, но и других фенольных соединений, в частности флавоноидов [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>].</p><p>Эти исследования подтверждают рациональность включенного в Европейскую фармакопею9 количественного определения суммы ГКК в растениях СФМ с молибдатом натрия и нитритом натрия.</p><p>Согласно ГФ РБ10 одуванчика лекарственного (Taraxacum officinale Wigg.) корни стандартизуют по сумме ГКК с пересчетом на кофейную кислоту методом СФМ по реакции с реактивом Арнова после экстракции ГКК водой. Для поиска более эффективных экстрагентов ГКК из данного сырья были использованы вода, органические растворители (этанол, пропанол-1, ацетон, диметилсульфоксид) и их водные растворы с объемными долями 20; 40; 60 и 80%. Содержание ГКК определяли в пересчете на хлорогеновую кислоту согласно изложенной в ГФ РБ СФМ-методике. Установлено, что водно-органические экстрагенты извлекают ГКК из этого сырья в 2–4 раза эффективнее, чем фармакопейный экстрагент — вода. Так, среднее содержание ГКК при экстракции 60% пропанолом-1 составило 0,796%; 60% диметилсульфоксидом — 0,553%; 60% ацетоном — 0,422%; 40% этанолом — 0,345% и водой — 0,204% [<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>].</p><p>Влияние предварительной ультразвуковой обработки сырья и ультразвуковой экстракции в течение различных промежутков времени на содержание ГКК в извлечениях из корней одуванчика лекарственного (Taraxacum officinale Wigg.) изучалось также методом СФМ с использованием реакции с реактивом Арнова. Показано, что оптимальное время ультразвуковой экстракции составляет 15 мин. Увеличение продолжительности ультразвуковой обработки исходного сырья или экстракции снижает содержание ГКК в 1,7–2,5 и 1,1–2,2 раза соответственно [<xref ref-type="bibr" rid="cit21">21</xref>].</p><p>Как отмечается в работе [<xref ref-type="bibr" rid="cit22">22</xref>], применение дополнительных технологий при пробоподготовке позволяет получить серьезные преимущества: сократить время экстракции, увеличить выход экстрагируемых компонентов и снизить расход растворителя. Ультразвуковая экстракция — метод достаточно дешевый и требующий минимального аппаратурного оформления — начинает все чаще использоваться для выделения БАС из растительного сырья.</p><p>При количественном определении методом СФМ по реакции с реактивом Арнова содержание суммы ГКК в извлечениях из травы яснотки белой (Lamium album L.) и яснотки крапчатой (Lamium maculatum L.) составило от 2 до 4% в пересчете на хлорогеновую кислоту [<xref ref-type="bibr" rid="cit23">23</xref>]. Реактив Арнова использован и для количественного определения ГКК в пересчете на хлорогеновую кислоту в траве четырех видов растений рода бодяк: бодяк болотный (Cirsium palustre (L.) Scop.), бодяк серый (Cirsium canum (L.) All.), бодяк огородный (Cirsium oleraceum (L.) Scop.) и бодяк обыкновенный (Cirsium vulgare (Savi) Ten.). Установлено, что наибольшее количество ГКК содержит бодяк огородный (Cirsium oleraceum (L.) Scop.) — 0,8% [<xref ref-type="bibr" rid="cit24">24</xref>].</p><p>В.А. Костиковой и Т.Н. Веклич с помощью СФМ-метода с реактивом Арнова исследовано содержание фенолкарбоновых кислот в листьях и соцветиях спиреи иволистной (Spiraea salicifolia L.), произрастающей на территории Сибири и Дальнего Востока России. Выявлено, что концентрация фенолкарбоновых кислот в листьях (3,59–7,69%) выше, чем в соцветиях (2,24–5,52%) вне зависимости от территории произрастания растений [<xref ref-type="bibr" rid="cit25">25</xref>].</p></sec><sec><title>ЗАКЛЮЧЕНИЕ</title><p>Для количественного определения ГКК и других полифенольных соединений в растениях, произрастающих или культивируемых на территории Российской Федерации, широко используются различные варианты СФМ. Объектом исследования в основном является надземная часть растений. Для исключения влияния других сопутствующих БАС, в том числе полифенолов, используются несколько методов. Метод хромато-СФМ позволяет получать более достоверные результаты количественного определения ГКК, чем прямая СФМ, однако он длителен и многостадиен и, возможно, вследствие этого не обладает высокой точностью. Другой альтернативой методу прямой СФМ может являться метод экстракционной СФМ, который позволяет отделять ГКК от сопутствующих ингредиентов фенольной структуры, в частности флавоноидов. Данный метод также длителен и многостадиен, требует использования токсического растворителя. Поэтому описанные методы в настоящее время не получили широкого распространения.</p><p>Для количественного определения ГКК в растительном сырье методом СФМ при наличии сопутствующих полифенольных соединений перспективно использование расчетных способов. Такие методики позволяют математическими способами вычленять из суммарного поглощения БАС поглощение соответствующих групп действующих веществ и рассчитывать их количественное содержание в пересчете на СО соединений соответствующего класса. Это позволяет упростить процедуру количественного определения за счет исключения операций по разделению БАС.</p><p>Другой способ повысить селективность количественного определения ГКК методом СФМ при содержании в растительных объектах суммы фенольных соединений основан на их способности окисляться реактивом Арнова, доступным и простым в изготовлении.</p><p>Таким образом, для анализа содержания ГКК могут быть использованы различные варианты СФМ, которые доступны и относительно просты в исполнении. В то же время не все эти методы имеют достаточную селективность для количественного определения ГКК в присутствии других полифенольных соединений, что свидетельствует о необходимости дальнейшего совершенствования методик количественного определения ГКК в растительном сырье.</p><p>Вклад авторов. Все авторы подтверждают соответствие своего авторства критериям ICMJE. Наибольший вклад распределен следующим образом: Е.В. Компанцева — существенный вклад в концепцию и дизайн статьи; сбор, анализ литературы, утверждение окончательного варианта статьи для публикации; А.С. Саушкина — написание текста и критический пересмотр его содержания, утверждение окончательного варианта статьи для публикации; А.Ю. Айрапетова — сбор, анализ литературы, редактирование текста рукописи, утверждение окончательного варианта статьи для публикации.</p><p>Authors’ contributions. All authors confirm that they meet the ICMJE criteria for authorship. The most significant contributions were as follows. Eugenia V. Kompantseva made a significant contribution to the study concept and design, collected and analysed literature, approved the final version of the manuscript for publication. Anna S. Saushkina drafted the manuscript and critically revised its content, and approved the final version of the manuscript for publication. Asya Yu. Ayrapetova collected and analysed literature, edited the manuscript, approved the final version of the manuscript for publication.</p><p>1. European Pharmacopoeia. 8th ed. Strasbourg: EDQM; 2014.
2. Государственная фармакопея Республики Беларусь. Изд. 2. Т. II. Контроль качества субстанций для фармацевтического использования и лекарственного растительного сырья. Молодечно: Победа; 2016.
3. Там же.
4. Отношение расстояния от стартовой линии до центра зоны вещества к расстоянию от стартовой линии до линии фронта.
5. Шевченко АИ. Разработка технологии и стандартизация лекарственных средств антимикробного действия из травы посконника конопляного: автореф. дис. … канд. фарм. наук. Пятигорск; 2009.
6. European Pharmacopoeia. 8th ed. Strasbourg: EDQM; 2014. Государственная фармакопея Республики Беларусь. Изд. 2. Т. II. Контроль качества субстанций для фармацевтического использования и лекарственного растительного сырья. Молодечно: Победа; 2016.
7. Старчак ЮА. Фармакогностическое изучение растений рода Тимьян (Thymus L.) как перспективного источника получения фитопрепаратов: дис. … д-ра фарм. наук. Самара; 2016.
8. Там же.
9. European Pharmacopoeia. 8th ed. Strasbourg: EDQM; 2014.
10. Государственная фармакопея Республики Беларусь. Т. II. Контроль качества субстанций для фармацевтического использования и лекарственного растительного сырья. Молодечно: Победа; 2016.
</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Денисенко ТА, Вишникин АБ, Цыганок ЛП. Спектрофотометрическое определение суммы фенольных соединений в растительных объектах с использованием хлорида алюминия, 18-молибдодифосфата и реактива Фолина–Чокальтеу. Аналитика и контроль. 2015;19(4):373–80. https://doi.org/10.15826/analitika.2015.19.4.012</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Denisenko TA, Vishnikin AB, Tsyganok LP. Spectrophotometric determination of sum of phenolic compounds in plant using aluminum chloride, 18-molybdodiphosphate and Folin–Ciocalteu reagents. Analytics and Control. 2015;19(4):373–80 (In Russ.). https://doi.org/10.15826/analitika.2015.19.4.012</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Круглов ДС, Агапкина АС, Свечникова ОП, Клочкова СА. Спектрофотометрическое определение суммы фенолкарбоновых кислот некоторых растений семейства Boraginaceae. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск; 2007. Вып. 62. С. 73–5.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kruglov DS, Agapkina AS, Svechnikova OP, Klochkova SA. Spectrophotometric determination of the amount of phenolic carboxylic acids of some plants of the Boraginaceae family. In.: Development, research and marketing of new pharmaceutical products. Collection of scientific papers. Pyatigorsk; 2007. V. 62. P. 73–5 (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Коротаева МС, Фурса НС. Сезонная динамика накопления фенольных соединений в побегах багульника болотного. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск; 2007. Вып. 62. С. 71–3.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Korotaeva MS, Fursa NS. Seasonal dynamics of the accumulation of phenolic compounds in the shoots of the marsh beetle. In.: Development, research and marketing of new pharmaceutical products. Collection of scientific papers. Pyatigorsk; 2007. V. 62. P. 71–3 (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ким НЕ, Ким НО, Ханина МА, Некрасова МФ. Изучение биологически активных веществ в растениях семейства грушанковых ортилия однобокая (Orthilia secunda (L.) House) и грушанкa круглолистная (Pyrola rotundifolia L.), собранных в различных регионах Сибири. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск; 2007. Вып. 62. С. 65–7.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kim NE, Kim NO, Khanina MA, Nekrasova MF. The study of biologically active substances in Pyrola family plants: one-sided wintergreen (Orthilia secunda (L.) House) and round-leaved wintergreen (Pyrola rotundifolia L.) collected in various regions of Siberia. In.: Development, research and marketing of new pharmaceutical products. Collection of scientific papers. Pyatigorsk; 2007. V. 62. P. 65–7 (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Круглов ДС, Ильиных АВ. Исследование некоторых соединений фенольной природы в вегетативных и генеративных органах черники обыкновенной (Vaccinium myrtillus L.). В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск; 2007. Вып. 62. С. 75–7.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kruglov DS, Ilyinykh AV. Research of some compounds of phenolic nature in vegetative and generative organs of blueberries (Vaccinium myrtillus L.). In.: Development, research and marketing of new pharmaceutical product. Collection of scientific papers. Pyatigorsk; 2007. V. 62. P. 75–7 (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Крупенникова ВГ, Федосеева ГМ. Фенолкарбоновые кислоты скабиозы венечной и скабиозы бледно-желтой. Сибирский медицинский журнал. 2007;71(4):90–2. EDN: PFBJJF</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Krupennikova VG, Fedoseeva GM. Phenolcarbon acids of Scabiosa comosa and Scabiosa ochroleuca. Siberian Medical Journal. 2007;71(4):90–2 (In Russ.). EDN: PFBJJF</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Чистякова АС, Мальцева АА, Сливкин АИ. Определение содержания суммы оксикоричных кислот в траве синюхи голубой. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск; 2011. Вып. 66. С. 216–7.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Chistyakova AS, Maltseva AA, Slivkin AI. Determination of the content of the sum of oxycoric acids in the grass of Jacob’s ladder. In.: Development, research and marketing of new pharmaceutical products. Collection of scientific papers. Pyatigorsk; 2011. V. 66. P. 216–7 (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Вдовенко-Мартынова НН, Степанюк СН. Фенольные соединения гравилата городского (Geum urbanum L.) травы. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск; 2007. Вып. 62. С. 27–8.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vdovenko-Martynova NN, Stepanyuk SN. Phenolic compounds of urban gravilate (Geum urbanum L.) grass. In.: Development, research and marketing of new pharmaceutical products. Collection of scientific papers. Pyatigorsk; 2007. V. 62. P. 27–8 (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Овчинникова СЯ, Мезенова ТД, Орловская ТВ. Определение хлорогеновой кислоты методом планарной хроматографии. Современные проблемы науки и образования. 2013;(6):1022. EDN: RVDCXN</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ovchinnikova SYa, Mezenova TD, Orlovskaya TV. Determination method chlorogenic acid planar chromatography. Modern Problems of Science and Education. 2013;(6):1022 (In Russ.). EDN: RVDCXN</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Компанцева ЕВ, Айрапетова АЮ, Саушкина АС. Использование спектрофотометрического метода для определения гидроксикоричных кислот в лекарственном растительном сырье. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств. 2024;14(2):181–95. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2024-14-2-181-195</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kompantseva EV, Ayrapetova AYu, Saushkina AS. Spectrophotometric determination of hydroxycinnamic acids in herbal drugs. Part 1. Direct spectrophotometry. Bulletin of the Scientific Centre for Expert Evaluation of Medical Products. Regulatory Research and Medicine Evaluation. 2024;14(2):181–95 (In Russ.). https://doi.org/10.30895/1991-2919-2024-14-2-181-195</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Косман ВМ, Зенкевич ИГ. Количественное экстракционно-спектрофотометрическое определение суммарного содержания гидроксикоричных кислот в присутствии флавоноидов в экстрактивных веществах некоторых лекарственных растений. Растительные ресурсы. 2001;37(4):123–9. EDN: KBHJMK</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kosman VM, Zenkevich IG. Quantitative extraction-spectrophotometric determination of the total content of hydroxycinnamic acids in the presence of flavonoids in extractive substances of some medicinal plants. Plant Resources. 2001;37(4):123–9 (In Russ.). EDN: KBHJMK</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ларькина МС, Кадырова ТВ, Ермилова ЕВ. Изучение динамики накопления фенолкарбоновых кислот в надземной части василька шероховатого. Химия растительного сырья. 2008;(3):71–4. EDN: JUVCWP</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Larkina MS, Kadyrova TV, Ermilova EV. Study of the dynamics of accumulation of phenol-carboxylic acids in the aboveground part of cornflower. Chemistry of Plant Raw Materials. 2008;(3):71–4 (In Russ.). EDN: JUVCWP</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Санникова ЕГ, Попова ОИ, Компанцева ЕВ, Фролова ОО. Изучение фенолкарбоновых кислот побегов ивы трехтычинковой, произрастающей на Северном Кавказе. Фармация и фармакология. 2015;(2):13–7. EDN: UBRBNR</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sannikova EG, Popova OI, Kompantseva EV, Frolova OO. Study of phenolcarbonic acids of Salix triandra L. tendrils growing in the North Caucasus. Pharmacy and Pharmacology. 2015;(2):13–7 (In Russ.). EDN: UBRBNR</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Хитева ОО. Определение фенолокислот в сырье видов ивы, произрастающих на Северном Кавказе. В кн.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Сборник научных трудов. Пятигорск; 2012. Вып. 67. С. 131–3.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Khiteva OO. Determination of phenolic acids in the raw materials of willow species growing in the North Caucasus. In.: Development, research and marketing of new pharmaceutical products. Collection of scientific papers. Pyatigorsk; 2012. V. 67. P. 131–3 (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Карпова ЕА, Каракулов АВ. Фенольные соединения близкородственных видов рода Rhododendron L. (Ericaceae). Turczaninowia. 2011;14(3):145–9. EDN: OJJSTZ</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Karpova EA, Karakulov AV. Phenolic compounds of closely related species of the genus Rhododendron L. (Ericaceae). Turczaninowia. 2011;14(3):145–9 (In Russ.). EDN: OJJSTZ</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Сампиев АМ, Давитавян НА. Количественное определение флавоноидов, изофлавоноидов и фенолкарбоновых кислот в траве стальника полевого. Химико-фарацевтический журнал. 2009;43(7):25–31. EDN: TMQVQP https://doi.org/10.1007/s11094-009-0314-z</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sampiev AM, Davitavyan NA. Assay of flavonoids, isoflavonoids, and phenolcarboxylic acids in the field restharrow. Pharm Chem J. 2009;43(7):399–405. https://doi.org/10.1007/s11094-009-0314-z</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Сампиев АМ, Никифорова ЕВ, Хочава МР. Кукурузные рыльца: от выявления действующих веществ до создания технологии малоотходной переработки сырья. Сообщение 1. Проблема нормирования качества и получения фитопрепаратов, ориентированных на содержание действующих веществ. Фитохимия кукурузных рылец как первый этап в установлении действующих веществ. Кубанский научный медицинский вестник. 2006;(12):106–10. EDN: HVYUDJ</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sampiev AM, Nikiforova EV, Khochava MR. Corn silk: from revealing working substances before creation of technology economical processings of raw material. The message 1. A problem of normalization of quality and reception of preparations from vegetative raw material, working substances focused on the aintenance (contents). Phytochemistry corn silk as the first stage in an establishment of working substances. Kuban Scientific Medical Bulletin. 2006;(12):106–10 (In Russ.). EDN: HVYUDJ</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Дворникова ЛГ, Турецкова ВФ. Изучение состава фенольных соединений столбиков с рыльцами кукурузы, заготовленных на Алтае. Химия растительного сырья. 2013;(2):127–34. Dvornikova LG, Turetskova VF. Study of phenolic compounds of corn silk, gathered in Altai Region. Chemistry of Plant Raw Materials. 2013;(2):127–34 (In Russ.). https://doi.org/10.14258/jcprm.1302127</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dvornikova LG, Turetskova VF. Study of phenolic compounds of corn silk, gathered in Altai Region. Chemistry of Plant Raw Materials. 2013;(2):127–34 (In Russ.). https://doi.org/10.14258/jcprm.1302127</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Бубенчикова ВН, Старчак ЮА. Разработка и валидация методики количественного определения суммы гидроксикоричных кислот в растениях рода тимьян. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2015;(5):14–8. EDN: RULXHA</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bubenchikova VN, Starchak UA. Development and validation of methods for quantitative determination hydroxycinnamic acid’s amount in the plant of Thymus L. genus. Problems of Biological, Medical and Pharmaceutical Chemistry. 2015;(5):14–8 (In Russ.). EDN: RULXHA</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Лавшук ВВ. Водно-органическая экстракция гидроксикоричных кислот из одуванчика лекарственного корней. В кн. Актуальные проблемы современной медицины и фармации. Сборник тезисов международной научнопрактической конференции студентов и молодых ученых. Минск; 2019. С. 1538.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lavshuk VV. Water-organic extraction of hydroxycinnamic acids from dandelion medicinal roots. In: Actual problems of modern medicine and pharmacy. Collection of abstracts of the International Scientific and Practical Conference of students and young scientists. Minsk; 2019. P. 1538 (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Лавшук ВВ, Лукашов РИ. Влияние ультразвука на эффективность экстракции гидроксикоричных кислот из одуванчика лекарственного корней. Вестник Башкирского государственного медицинского университета. 2019;(4):199–203. EDN: HPLDKK</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lavshuk VV, Lukashov RI. Influence of ultrasound on the efficiency of extraction of hydroxycinnamic acids from a dandelion roots. Bulletin of the Bashkir State Medical University. 2019;(4):199–203 (In Russ.). EDN: HPLDKK</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit22"><label>22</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Матвеева ВИ, Ручкина АГ, Кобраков КИ, Шпигун ЛК, Шмакова НС. Сравнительная характеристика экстрактов некоторых растений семейства вересковых и эффективности методов их получения. Химия растительного сырья. 2022;(2):105–12. https://doi.org/10.14258/jcprm.20220210516</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Matveeva VI, Ruchkina AG, Kobrakov KI, Shpigun LC, Shmakova NS. Comparative characteristics of some plants family heather extracts and the effectiveness of methods for their production. Chemistry of Plant Raw Materials. 2022;(2):105–12 (In Russ.). https://doi.org/10.14258/jcprm.20220210516</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit23"><label>23</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Терлецкая ВА, Лукашов РИ. Сравнительный анализ содержания биологически активных веществ в извлечениях из травы яснотки белой и яснотки крапчатой. В кн.: Современные тенденции развития технологий здоровьесбережения. Сборник научных трудов Х Международной научнопрактической конференции. М.: ВИЛАР; 2022. С. 290–4. https://doi.org/10.52101/9785870191058_290</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Terletskaya VA, Lukashov RI. Comparative analysis of the biologically active substances content in the herb extracts from white dead-nettle and spotted dead-nettle. In: Modern trends in the development of health-saving technologies. Collection of scientific papers of X International Scientific and Practical Conference. Moscow: VILAR; 2022. P. 290– 5 (In Russ.). https://doi.org/10.52101/9785870191058_290</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit24"><label>24</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Туровец АВ, Лукашов РИ. Количественное определение гидроксикоричных кислот и фенольных соединений в растениях рода бодяк. В кн.: Современные тенденции развития технологий здоровьесбережения. Сборник научных трудов Х Международной научно-практической конференции. М.: ВИЛАР; 2022. С. 264–8. https://doi.org/10.52101/9785870191058_264</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Turovets AV, Lukashov RI. Quantitative determination of hydroxycoric acids and phenolic compounds in plants of the thistle genus. In: Modern trends in the development of health-saving technologies. Collection of scientific papers of X International Scientific and Practical Conference. Moscow: VILAR; 2022. P. 264–8 (In Russ.). https://doi.org/10.52101/9785870191058_264</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit25"><label>25</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Костикова ВА, Веклич ТН. Содержание фенолкарбоновых кислот и флавоноидов в листьях и соцветиях Spiraea salicifolia L. (Rosaceae). В кн.: Проблемы изучения растительного покрова Сибири. Труды VII Международной научной конференции, посвященной 135-летию Гербария им. П.Н. Крылова Томского государственного университета и 170-летию со дня рождения П.Н. Крылова. Томск: ТГУ; 2020. С. 64–6. https://doi.org/10.17223/978-5-94621-927-3-2020-20</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kostikova VA, Veklich TN. Content of phenolcarboxylic acids and flavonoids inleaves and inflorescences of Spiraea salicifolia L. (Rosaceae). In: Problems of studying the vegetation cover of Siberia. Proceedings of the VII International Scientific Conference, dedicated to the 135th anniversary of P.N. Krylov Herbarium of Tomsk State University and the 170th anniversary of the birth of P.N.Krylov. Tomsk: TSU; 2020. P. 64–6 (In Russ.). https://doi.org/10.17223/978-5-94621-927-3-2020-20.</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
